Чума - инфекционное трансмиссивное заболевание, которое вызывается бактериями рода Иерсиний. Заболевание имело эпидемический характер в прошлом. Сейчас естественные очаги чумы не уменьшаются и охватывают около 10% суши. Заболевание протекает в нескольких клинических формах. Наиболее опасная - легочная. Больной легочной формой чумы представляет эпидемиологическую опасность для населения. Для борьбы с инфекцией разработана вакцина чумная живая сухая для инъекций, накожного скарификационного нанесения и ингаляций для профилактики чумы.
Вакцина чумная живая сухая для инъекций, накожного скарификационного нанесения и ингаляций для профилактики чумы: состав и форма выпуска
Вакцина выпускается в форме лиофилизата во флаконах объемом 2 миллилитра. В дальнейшем из этой субстанции готовится раствор для различных путей введения. В прививке используются живые ослабленные бактерии специального штамма. В процессе приготовления лиофилизата используют такие вещества: сахарозно-желатиновая среда, тиомочевина.
Препарат имеет беловато-желтоватой окрас и не должен содержать патологических примесей. После добавления физиологического раствора спустя несколько минут образуется гомогенная масса.
Фармакологическое действие вакцины
Вакцина против чумы используется для выработки специфического приобретенного иммунитета у людей, которые имеют риск заболеть данным заболеванием. В основе действия прививки лежит иммунологический ответ организма на попадание чужеродных антигенов (белков). Специфический иммунитет формируется в несколько этапов:
- Первый - поглощение бактерий, введенных в тело человека при помощи вакцины. Эту функцию выполняют специальные клетки - макрофаги. Они находятся во всех тканях человеческого тела. Макрофаги поглощают иерсинии и ферментируют их. В результате этого бактерии теряют свою клеточную структуру и освобождаются их антигены. Иммунные клетки выводят чужеродные белки на поверхность, чтобы сведенья об их структуре получили другие клетки, а именно лимфоциты.
- На втором этапе в работу вовлекаются Т- и В-лимфоциты. Различные виды этих клеток выполняют свои отдельные, но очень важные функции. Например, Т-лимфоциты формируют иммунологическую память, уничтожают клетки тела, пораженные бактериями или вирусами. В-лимфоциты после получения сведений о патологическом агенте превращаются в плазматические клетки. Последние выполняют одну из важнейших функций иммунитета - выработку иммуноглобулинов (антител).
В результате действия вакцины в организме человека вырабатывается значительное количество специфических антител, которые нейтрализуют возбудителя чумы. Иммуноглобулины продолжают циркулировать в крови на протяжении одного года, создавая иммунитет против инфекции. Однако их уровень постепенно снижается, поэтому при необходимости проводится ревакцинация.
Показания и подготовка для введения прививки
Показание к иммунопрофилактике чумы - наличие вспышки заболевания среди грызунов. Именно они переносчики инфекции. Вакцинацию также проводят в тех случаях, когда существует возможность заражения чумой от больного человека. Вопрос о необходимости вакцинации решается совместно с доктором. Подготовка к прививанию состоит из сбора сведений о состоянии здоровья пациента, перенесенных заболеваниях и травмах. Затем доктор проводит осмотр больного.
Важно! Термометрия - обязательная процедура перед прививанием
Когда нет противопоказаний к иммунопрофилактике, проводят прививание. Данную манипуляцию проводит доктор или специально обученный медицинский персонал.
Способ применения вакцины от чумы
Вакцинацию против чумы начинают с определения пригодности вакцины. Медработник визуально оценивает флакон с лиофилизатом на наличие трещин в стекле, изменение цвета и консистенции препарата, присутствия примесей. Затем проверяется наличие маркировки и срока годности. После лиофилизат разводится необходимым количеством физиологического раствора. Для каждого пациента используются отдельный одноразовый шприц (или игла) и стерильные перчатки.
Существует четыре способа введения вакцины. Они представлены в таблице:
|
Способ введения |
Техника выполнения |
|
Накожный способ |
Место вакцинации: внутренняя поверхность предплечья. Кожу в месте введения препарата предварительно очищают и протирают 70%-м раствором этилового спирта. Затем специальной иглой проводят легкое соскабливание эпидермиса в трех местах. На каждое из этих мест наносят по одной капле вакцины. Через каждую из них проводят по 8 линейных поверхностных штрихов в крестообразном направлении. Штрихи должны быть неглубокими, чтобы не вызывать значительную кровоточивость. После этого препарат на протяжении нескольких секунд интенсивно втираю в кожу. Прививочная доза составляет 0,15 мл |
|
Подкожный способ |
Место прививания - нижний угол лопатки. Кожа предварительно обрабатывается раствором антисептика. 0,5 мл вакцины вводится строго подкожным методом. Достичь этого возможно только при правильном положении шприца. Угол между ним и кожей при подкожном введении должен составлять 40-45⁰. После выполнения инъекции место укола повторно обрабатывается антисептиком |
|
Подкожный безыгольный способ |
В этом случае используется специальный инъектор, который предварительно стерилизуется. Одна прививочная доза составляет 0,5 мл. Объем препарата варьирует в зависимости от возраста пациента. Инъекция проводится только в область дельтовидной мышцы |
|
Внутрикожный безыгольный метод |
Обработка кожи, как и при предыдущих методах. Прививочная доза - 0,1 мл. После введения препарата на этом месте появляется незначительная папула, которая рассасывается на протяжении последующих нескольких часов |
Совет врача. В случаях, когда прививание проводилось внутрикожным или подкожным методами необходимо находиться под наблюдением медработника не менее часа. В редких случаях у пациента в ответ на прививку может возникнуть шоковое состояние
Противопоказания для введения вакцины
Противопоказание к вакцинации - наличие инфекционного заболевания в активной стадии. Прививка возможна только спустя один месяц после полного выздоровления. Вакцину нельзя применять при наличии заболеваний со стороны таких органов и систем:
- Желудочно-кишечный тракт - язвенная болезнь желудка и двенадцатиперстной кишки.
- Сердечно-сосудистая система - инфаркт миокарда, нестабильная стенокардия, гипертоническая болезнь ІІІ степени.
- Мочеполовая система - заболевания, которые сопровождаются почечной недостаточностью последних стадий.
Иммунопрофилактику чумы не проводят у больных с декомпенсированным сахарным диабетом, тяжелым тиреотоксикозом, заболеваниями центральной нервной системы. Препарат не применяют на фоне использования стероидных средств и антиметаболитов.
Побочные действия и осложнения прививания
После введения препарата возникают некоторые местные проявления и изменения общего состояния пациента, которые считаются нормальными и не несут опасности. При накожном методе введения иногда возникает отечность, мелкая сыпь и инфильтрация. При внутрикожном и подкожном введении возникает покраснение кожи, припухлость в месте инъекции. Изменения состоят в недомогании, головных болях, незначительном повышении температуры тела.
К патологическим поствакцинальным реакциям относят:
- Развитие лимфаденита - воспаления близлежащих лимфатических узлов.
- Гипертермия - повышение температуры тела выше 38⁰ С.
- Аллергические реакции: крапивница, анафилактический шок.
Обо всех случая возникновения поствакцинальных реакций нужно немедленно сообщить доктору.
Взаимодействие с другими иммунобиологическими препаратами
Препарат нельзя использовать параллельно с другими живыми вакцинами. Иммунопрофилактика на фоне приема иммунодепрессантов (средств, которые угнетают иммунную систему) часто бывает не эффективной, поскольку иммунитет, который вырабатывается, не имеет достаточную силу.
Условия хранения и срок годности вакцины
Срок годности препарата зависит от используемого консерванта и составляет:
- 2 года при использовании сахарозо-желатиновой среды с тиомочевиной.
- 3 года при использовании сахарозо-желатиновой среды с глутаминово-кислым натрием.
Препарат хранят в специальном оборудовании при температуре от -20 до +6 градусов по Цельсию.
Аналоги препарата
На фармацевтическом рынке выпускается оральная вакцина для профилактики чумы. Форма выпуска: таблетки в упаковках по 40 или 90 штук. Вакцинация при помощи этой вакцины проводится пациентам старше 14 лет. Ревакцинация - через год по эпидемиологическим показаниям.
Пассивная иммунизация . В отличие от вакцин, протективная активность которых проявляется не ранее чем через 5-7 сут после введения и зависит от способности макроорганизма к адекватному иммунному ответу, введение готовых специфических антител является средством немедленной защиты от инфекции независимо от индивидуального иммунного статуса. Антитела слаботоксичны и высокоизбирательны. Продолжительность напряженного иммунитета может достигать нескольких недель за счет того, что некоторые изотипы человеческого IgG имеют период полужизни более 30 сут. Протективные свойства моноклональных антител к F1- и V-антигену Y. pestis продемонстрированы при моделировании как бубонной, так и легочной формы чумы.В последние годы с появлением новых технологий: гибридом, бактериальных, векторных и фаговых систем - произошел прорыв в технологии производства профилактических и лечебных иммуноглобулинов.
Уже более 20 лет лицензированы восемь моноклональных антител для клинического применения, причем три из них - гетерогибридомные (мышь-человек), пять - «гуманизиро-ванные» мышиные моноклональные антитела. Однако среди них профилактических или лечебных лицензированных противочумных моноклональных антител нет, что предположительно можно объяснить высокой степенью агрессивности возбудителя чумы, скоротечностью патологического процесса и сложностью до конца не изученного пато- и иммуногенеза чумы с преобладанием системы клеточной защиты организма.
Активная иммунизация . УБИТЫЕ ЦЕЛЬНОКЛЕТОЧНЫЕ ВАКЦИНЫ. Вакцинопрофилактика чумы насчитывает более 100 лет. Первые вакцины были приготовлены из убитых различными способами бактерий чумы в конце XIX - начале XX в. Наиболее широкое распространение, особенно в Индии, получила инактивированная нагреванием и консервированная фенолом вакцина Хавкина. Она способствовала снижению заболеваемости и смертности от чумы при испытаниях в очагах эпидемий. На основании многолетнего опыта массовых прививок убитыми корпускулярными вакцинами в Манчжурии, на Яве и Мадагаскаре исследователи пришли к заключению, что люди приобретают относительный иммунитет к чуме, о чем свидетельствовали случаи заболевания среди привитых, хотя и реже, чем у невакцинированных пациентов.
Опасаясь реверсии вирулентности живой противочумной вакцины EV, превосходящей по эпидемиологической эффективности убитые вакцины, и ссылаясь на ее высокую реактогенность, специалисты в США разработали противочумную вакцину USP, состоящую из убитых формальдегидом микробов вирулентного штамма Y. pestis 195Р. Эта вакцина была лицензирована и выпускалась с 1946 по 1998 г. Аналогичную USP противочумную вакцину из вышеназванного штамма производят в Австралии; она лицензирована для клинического применения только внутри страны. Вакцину вводят двукратно с интервалом 1-4 нед и затем осуществляют бустерную прививку через 6 мес. Жидкая противочумная инактивированная вакцина I.P., представляющая собой усовершенствованную вакцину Хавкина, производится в Индии.
ЖИВЫЕ АТТЕНУИРОВАННЫЕ ВАКЦИНЫ. Массовое применение живых вакцин в 1920-30-е гг. в эндемичных по чуме очагах дало убедительные доказательства их безопасности и эффективности по сравнению с убитыми противочумными вакцинами. При этом живая противочумная вакцина в зависимости от условий применения и инфицирующей дозы в определенной степени защищала от легочной формы чумы. За прошедшие десятилетия живой противочумной вакциной были привиты миллионы людей без каких-либо серьезных осложнений. Из множества предложенных для применения чумных аттенуированных вакцинных штаммов наибольшим преимуществом обладал штамм Y. pestis EV, полученный французскими учеными Жираром и Робиком в результате ежемесячных пересевов на питательном агаре при температуре 18-20 °С в течение 5 лет. В 1936 г. вакцинный штамм EV был передан Жираром из Пастеровского института в г. Тананариве (о. Мадагаскар) советским ученым.
С 1942 г. в СССР были организованы массовые прививки чумной живой вакциной ЕВ. В настоящее время коммерческую (лицензированную) противочумную живую сухую вакцину из штамма Y. pestis EV линии НИИЭГ для чрескожного и аэрозольного применения производят в РФ в Ставропольском противочумном институте, а в 48-м ЦНИИ МО РФ (г. Киров) выпускается препарат и для при-менения внутрь. Аналогичную вакцину (кроме таблеток) производят в бывшем Алма-Атинском противочумном институте. Следует отметить, что коммерческую противочумную живую вакцину выпускают также в Индонезии из другого аттенуированного штамма Y. pestis - Харбин. В соответствии с современными достижениями биотехнологии, микробиологии, биохимии в РФ производство противочумной живой сухой вакцины на всех этапах технологического процесса, начиная от приготовления посевного материала и заканчивая лиофильной сушкой препарата и фасовкой готовой продукции, постоянно совершенствуется.
Препарат представляет собой лиофилизированную живую культуру вакцинного штамма чумного микроба ЕВ линии НИИЭГ со стабилизатором. Вакцинацию проводят однократно подкожным, накожным, внутрикожным или ингаляционным способом. Для формирования иммунитета против легочной чумы предпочтительнее инга-ляционный способ введения вакцины. При чрескожной иммунизации чувствительных к чуме животных вакцинным штаммом ЕВ альвеолярные макрофаги, в отличие от перитонеальных, претерпевают изменения, не затрагивающие их бак-терицидную активность и не сопровождающиеся перераспределением их субпопу-ляций. В то же время аэрогенная иммунизация вызывает более интенсивную по сравнению с перитонеальными клетками активацию альвеолярных макрофагов, вследствие чего происходит перераспределение субпопуляций и перестраивается характер фагоцитоза - от незавершенного к завершенному.
СУБЪЕДИНИЧНЫЕ (ХИМИЧЕСКИЕ) ВАКЦИНЫ. К препаратам I поколения чумных вакцин относятся убитые корпускулярные и живые аттенуированные вакцины; II поколение представлено химическими (субъединичными) вакцинами на основе протективных антигенов.
В настоящее время в связи с прекращением производства в 1998 г. в США противочумной вакцины USP интенсивно проводятся исследования по созданию химической вакцины, в состав которой входят протективные антигены Y. pestis. Наиболее эффективной считают химическую противочумную вакцину, содержащую капсульный FI- и V-антиген, которая в экспериментах на лабораторных животных, в том числе на приматах, защищает их от бубонной и легочной чумы, вызванной как F, так и F-штаммами Y. pestis (в отличие от вакцины USP, обладающей защитным эффектом, в основном против чрескожного заражения), причем протективной активностью обладает в отдельности как капсульный FI-антиген, так и (в большей степени) V-антиген, в том числе V-антиген Y. pseudotuberculosis. Проведенные недавно клинические испытания на 145 добровольцах субъединич- ной чумной вакцины (rFI+rV) показали ее безопасность и иммуногенность. В РФ разрабатывают чумную химическую вакцину, состоящую из капсульного антигена FI Y. pestis и основного соматического антигена Y. pseudotuberculosis. Ее назначение - ревакцинация людей, изначально вакцинированных живой противочумной вакциной, которая создает полноценный грунд-иммунитет Отметили высокую протективную активность на беспородных мышах антигенного препарата субклеточных фракций Y. pestis и подтвердили активность субклеточных фракций в смеси с суммарной ДНК Y. pestis, обладающей ярко выраженной способностью активировать как неспецифическую, так и специфическую резистентность организма у человека и животных.
ВАКЦИНЫ (лат. vaccinus коровий) - препараты, получаемые из бактерий, вирусов и других микроорганизмов или продуктов их жизнедеятельности и применяемые для активной иммунизации людей и животных с целью специфической профилактики и лечения инфекционных болезней.
История
Еще в древние времена было установлено, что перенесенная однажды заразная болезнь, напр, оспа, бубонная чума, предохраняет человека от повторного заболевания. В последующем эти наблюдения развились в учение о постинфекционном иммунитете (см.), т. е. о повышенной специфической устойчивости против возбудителя, наступающей после перенесения вызванной им инфекции.
Давно было замечено, что люди, перенесшие болезнь в легкой форме, становятся невосприимчивыми к ней. На основе этих наблюдений у многих народов применялось искусственное заражение здоровых людей инфекционным материалом в надежде на легкое течение болезни. Например, с этой целью китайцы вкладывали в нос здоровым людям высушенные и размельченные оспенные струпья от больных. В Индии размельченные оспенные струпья прикладывали к коже, предварительно натертой до ссадин. В Грузии с той же целью делали уколы кожи иглами, смоченными оспенным гноем. Искусственную прививку оспы (вариоляцию) стали применять и в Европе, в частности в России, в 18 в., когда эпидемии оспы приняли угрожающие размеры. Однако этот метод предохранительных прививок не оправдался: наряду с легкими формами заболевания у многих привитая оспа вызывала тяжелое заболевание, а сами привитые становились источниками заражения окружающих. Поэтому в начале 19 в. вариоляция в европейских странах была запрещена. Африканские народы продолжали применять ее и в середине 19 в.
В связи с распространением вариоляции искусственные прививки заразного материала предпринимались и при некоторых других инфекциях: кори, скарлатине, дифтерии, холере, ветряной оспе. В России в 18 в. Д. С. Самойлович предлагал прививать гной из чумных бубонов лицам, непосредственно соприкасающимся с больными. Указанные попытки предохранения людей от инфекционных болезней сохраняют теперь лишь исторический интерес.
Введение в организм человека или домашних животных современных В. имеет целью добиться выработки прививочного иммунитета, аналогичного постинфекционному иммунитету, но с исключением опасности развития инфекционной болезни в результате прививок (см. Вакцинация). Впервые такая В. для иммунизации людей против оспы была получена английским врачом Э. Дженнером с использованием инфекционного материала от коров (см. Оспопрививание). Дата публикации труда Э. Дженнера (1798) считается началом развития вакцинопрофилактики, к-рая в течение первой половины 19 в. получила широкое распространение в большинстве стран мира.
Дальнейшее развитие учения о В. связано с работами основоположника современной микробиологии - Л. Пастера, который установил возможность искусственного ослабления вирулентности патогенных микробов (см. Аттенуация) и применения таких «аттенуированных» возбудителей для предохранительных прививок против холеры кур, сибирской язвы с.-х. животных и бешенства. Сопоставив свои наблюдения с открытой Э. Дженнером возможностью защиты людей от натуральной оспы прививкой им коровьей оспы, Л. Пастер создал учение о предохранительных прививках, а применяемые для этой цели препараты предложил в честь открытия Э. Дженнера называть В.
На последующих этапах развития учения о вакцинах большое значение имели работы Η. Ф. Гамалеи (1888), Р. Пфейффера и В. Колле (1898), показавшие возможность создания иммунитета не только прививками ослабленных живых микробов, но и убитыми культурами возбудителей болезней. Η. Ф. Гамалеи показал также принципиальную возможность иммунизации химическими В., получаемыми извлечением из убитых микробов иммунизирующих фракций. Большое значение имело открытие Г. Рамоном в 1923 г. нового вида вакцинирующих препаратов - анатоксинов.
Виды вакцин
Известны следующие виды вакцин: а) живые; б) убитые корпускулярные; в) химические; г) анатоксины (см.). Препараты, предназначенные для иммунизации против какой-либо одной инфекционной болезни, называют моновакцинами (напр., холерная или брюшнотифозная моновакцины). Дивакцины - препараты для иммунизации против двух инфекций (напр., против тифа и паратифа В). Большое значение имеет разработка препаратов, предназначенных для одновременной вакцинации против нескольких инфекционных болезней. Такие препараты, называемые ассоциированными В., очень облегчают организацию профилактических прививок в противоэпидемической практике. Примером ассоциированной вакцины может служить вакцина АКДС, в состав к-рой входит антиген коклюшного микроба, столбнячный и дифтерийный анатоксины. При правильном сочетании компонентов ассоциированных В. они способны создавать иммунитет в отношении каждой инфекции, практически не уступающей иммунитету, получаемому в результате применения отдельных моновакцин. В иммунологической практике применяется также термин «поливалентные» В., когда препарат предназначен для прививок против одной инфекции, но включает несколько разновидностей (серологических типов) возбудителя, напр, поливалентные В. против гриппа или против лептоспирозов. В отличие от применения ассоциированных В. в форме единого препарата, принято называть комбинированной вакцинацией введение нескольких В. одновременно, но в разные участки тела вакцинируемого.
С целью повышения иммуногенности В., особенно химических и анатоксинов, их применяют в форме препаратов, адсорбированных на минеральных коллоидах, чаще всего на геле гидроокиси алюминия или фосфата алюминия. Применение адсорбированных В. удлиняет период воздействия антигенов (см.) на организм привитого; кроме того, адсорбенты проявляют неспецифическое стимулирующее действие на иммуногенез (см. Адъюванты). Адсорбирование некоторых химических В. (напр., брюшнотифозной) способствует снижению их высокой реактогенности.
Каждый из указанных выше видов В. имеет свои особенности, положительные и отрицательные свойства.
Живые вакцины
Для приготовления живых В. применяют наследственно измененные штаммы (мутанты) патогенных микробов, лишенные способности вызывать специфическое заболевание у вакцинируемого, но сохранившие свойство размножаться в привитом организме, заселять в большей или меньшей степени лимф, аппарат и внутренние органы, вызывая скрытый, без клинического заболевания, инфекционный процесс - вакцинную инфекцию. Привитой организм может реагировать на вакцинную инфекцию местным воспалительным процессом (преимущественно при накожном способе вакцинации против оспы, туляремии и других инфекций), а иногда и общей непродолжительной температурной реакцией. Некоторые реактивные явления при этом могут быть обнаружены при лабораторных исследованиях крови привитых. Вакцинная инфекция, даже если она протекает без видимых проявлений, влечет за собой общую перестройку реактивности организма, выражающуюся в выработке специфического иммунитета против заболевания, вызываемого патогенными формами того же вида микроба.
Выраженность и продолжительность поствакцинального иммунитета различны и зависят не только от качества живой вакцины, но и от иммунологических особенностей отдельных инфекционных болезней. Так, напр., оспа, туляремия, желтая лихорадка ведут к развитию практически пожизненной невосприимчивости у переболевших. В соответствии с этим высокими иммунизирующими свойствами обладают и живые В. против названных болезней. В отличие от этого, трудно рассчитывать на получение высокоиммуногенных В., напр, против гриппа или дизентерии, когда сами эти заболевания не создают достаточно длительного и напряженного постинфекционного иммунитета.
Среди других видов вакцинных препаратов живые В. способны создавать у привитых наиболее выраженный поствакцинальный иммунитет, приближающийся по напряженности к постинфекционному иммунитету, но продолжительность его все же меньше. Напр., высокоэффективные В. против оспы и туляремии способны обеспечить устойчивость привитого человека против заражения на протяжении 5-7 лет, но не пожизненно. После прививок против гриппа лучшими образцами живых В. выраженный иммунитет сохраняется в ближайшие 6-8 мес.; постинфекционный иммунитет против гриппа резко падает к полутора - двум годам после болезни.
Вакцинные штаммы для приготовления живых В. получают различными путями. Э. Дженнер отобрал для вакцинации против оспы людей субстрат, содержащий вирус коровьей оспы, обладающий полным антигенным сходством с вирусом оспы человека, но маловирулентный для людей. Подобным образом отобран бруцеллезный вакцинный штамм № 19, относящийся к слабопатогенному виду Br. abortus, вызывающий бессимптомную инфекцию у привитых с последующим развитием иммунитета ко всем видам бруцелл, в т. ч. и к наиболее опасному для человека виду Br. melitensis. Однако отбор гетерогенных штаммов относительно редко позволяет найти вакцинные штаммы нужного качества. Чаще приходится прибегать к экспериментальному изменению свойств патогенных микробов, добиваясь лишения их патогенности для человека или вакцинируемых домашних животных при сохранении иммуногенности, связанной с антигенной полноценностью вакцинного штамма и с его способностью размножаться в привитом организме и вызывать бессимптомную вакцинную инфекцию.
Методы направленного изменения биол, свойств микробов для получения вакцинных штаммов разнообразны, но общей чертой этих методов является более или менее длительное культивирование возбудителя вне организма животного, чувствительного к данной инфекции. Для ускорения процесса изменчивости экспериментаторы применяют те или иные воздействия на культуры микробов. Так, Л. Пастер и Л. С. Ценковский для получения сибиреяз венных вакцинных штаммов культивировали возбудителя в питательной среде при повышенной против оптимума температуре;
А. Кальметт и Герен (С. Guerin) длительно, в течение 13 лет, культивировали туберкулезную палочку в среде с желчью, в результате чего получили всемирно известный вакцинный штамм БЦЖ (см.). Подобный прием длительного культивирования в неблагоприятных условиях среды применил Н. А. Гайский для получения высокоиммуногенного вакцинного туляремийного штамма. Иногда лабораторные культуры патогенных микробов утрачивают свою патогенность «спонтанно», т. е. под влиянием причин, которые не учитываются экспериментатором. Так был получен чумной вакцинный штамм EV [Жирар и Робик (G. Girard, J. Robie)], бруцеллезный вакцинный штамм № 19 [Коттон и Букк (W. Cotton, J. Buck)], слабореактогенный вариант этого штамма № 19 В А (П. А. Вершилова), применяемый в СССР для вакцинации людей.
Спонтанной утрате патогенности микробных культур предшествует появление в их популяции отдельных мутантов с качеством вакцинных штаммов. Поэтому вполне оправдан и перспективен метод селекции вакцинных клонов из лабораторных культур возбудителей, популяции которых в целом еще сохраняют патогенность. Такая селекция позволила H. Н. Гинсбургу получить сибиреязвенный вакцинный штамм - мутант СТИ-1, пригодный для вакцинации не только животных, но и людей. Аналогичный вакцинный штамм № 3 был получен А. Л. Тамариным, а Р. А. Салтыков селекционировал из патогенной культуры возбудителя туляремии вакцинный штамм № 53.
Вакцинные штаммы, полученные любым методом, должны быть апатогенны, т. е. неспособны вызывать специфическое инфекционное заболевание, в отношении человека и домашних животных, подвергающихся профилактической вакцинации. Но такие штаммы могут сохранять в той или иной мере ослабленную вирулентность (см.) для мелких лабораторных животных. Напр., апатогенные для человека туляремийные и сибиреязвенные вакцинные штаммы проявляют ослабленную вирулентность при введении белым мышам; часть животных, привитых массивными дозами живой вакцины, погибает. Это свойство живых В. не вполне удачно принято называть «остаточной вирулентностью». С наличием ее нередко связана и иммунологическая активность вакцинного штамма.
Для получения вакцинных штаммов вирусов применяется длительное пассирование их в организме одного и того же вида животных, иногда не являющихся естественными хозяевами данного вируса. Так, антирабическая вакцина готовится из штамма фиксированного вируса (virus fixe) Л. Пастера, полученного из вируса уличного бешенства, многократно пассированного через мозг кролика (см. Антирабические прививки). В результате этого резко возросла вирулентность вируса для кролика и снизилась вирулентность для других животных, а также для человека. Таким же путем вирус желтой лихорадки был превращен в вакцинный штамм путем длительных внутримозговых пассажей на мышах (штаммы Дакар и 17Д).
Заражение животных в течение длительного периода оставалось единственным методом культивирования вирусов. Это имело место до разработки новых методов их культивирования. Одним из таких методов явился метод культивирования вирусов на куриных эмбрионах. Использование данного метода позволило адаптировать к куриным эмбрионам высокоаттенуированный штамм 17Д вируса желтой лихорадки и начать широкое изготовление В. против этого заболевания. Метод культивирования на куриных эмбрионах позволил также получать вакцинные штаммы вирусов гриппа, паротита и других вирусов, патогенных для человека и животных.
Еще более существенные достижения в деле получения вакцинных штаммов вирусов стали возможны после открытия Эндерса, Уэллера и Роббинса (J. Enders, Т. Weller, F. Robbins, 1949), предложивших выращивать вирус полиомиелита в тканевых культурах, и введения в вирусологию однослойных клеточных культур и метода бляшек [Дульбекко и Фогт (R. Dulbecco, М. Vogt, 1954)]. Эти открытия позволили осуществить селекцию вариантов вирусов и получать чистые клоны - потомства одной или немногих вирусных частиц, обладающих определенными, наследственно закрепленными биол, свойствами. Сейбину (A. Sabin, 1954), использовавшему указанные методы, удалось получить мутанты вируса полиомиелита, характеризующиеся пониженной вирулентностью, и вывести вакцинные штаммы, пригодные для массового производства живой полиомиелитной вакцины. В 1954 г. те же методы были использованы для культивирования вируса кори, для получения вакцинного штамма этого вируса и затем для производства живой коревой В.
Метод клеточных культур с успехом используется как для получения новых вакцинных штаммов различных вирусов, так и для усовершенствования существующих.
Еще одним методом получения вакцинных штаммов вирусов является метод, основанный на применении рекомбинации (генетического скрещивания).
Так, напр., оказалось возможным получить рекомбинант, используемый как вакцинный штамм вируса гриппа А при взаимодействии авирулентного мутанта вируса гриппа, содержащего гемагглютинин H2 и нейраминидазу N2, и вирулентного штамма Гонконг, содержащего гемагглютинин H3 и нейраминидазу N2. Полученный рекомбинант содержал гемагглютинин H3 вирулентного вируса Гонконг и сохранил авирулентность мутанта.
Живые бактерийные, вирусные и риккетсиозные В. в последние 20- 25 лет наиболее широко изучаются и внедрены в противоэпидемическую практику в Советском Союзе. Применяются в практике живые В. против туберкулеза, бруцеллеза, туляремии, сибирской язвы, чумы, оспы, полиомиелита, кори, желтой лихорадки, гриппа, клещевого энцефалита, Ку-лихорадки, сыпного тифа. Изучаются живые В. против дизентерии, эпидемического паротита, холеры, брюшного тифа и некоторых других инфекционных болезней.
Методы применения живых В. разнообразны: подкожный (большинство В.), накожный или внутрикожный (В. против оспы, туляремии, чумы, бруцеллеза, сибирской язвы, БЦЖ), интраназальный (вакцина против гриппа); ингаляционный (вакцина против чумы); оральный или энтеральный (вакцина против полиомиелита, в стадии разработки - против дизентерии, брюшного тифа, чумы, некоторых вирусных инфекций). Живые В. при первичной иммунизации вводят однократно, за исключением В. против полиомиелита, где повторная вакцинация связана с введением вакцинных штаммов разных типов. В последние годы все шире изучается метод массовой вакцинации с помощью безыгольных (струйных) инъекторов (см. Инъектор безыгольный).
Основной ценностью живых В. является их высокая иммуногенность. При ряде инфекций, в первую очередь особо опасных (оспа, желтая лихорадка, чума, туляремия), живые В. являются единственным эффективным видом В., т. к. убитыми микробными телами или химическими В. не удается воспроизвести достаточно напряженного иммунитета против этих заболеваний. Реактогенность живых В. в целом не превышает реактогенности других прививочных препаратов. За время многолетнего широкого применения живых В. в СССР не наблюдалось случаев реверсии вирулентных свойств апробированных вакцинных штаммов.
К числу положительных качеств живых В. относятся также однократность их применения и возможность использования разнообразных способов аппликации.
К недостаткам живых В. следует отнести их относительно малую устойчивость при нарушении режима хранения. Эффективность живых В. определяется наличием в них живых вакцинных микробов, а естественное отмирание последних снижает активность В. Однако выпускаемые сухие живые В. при соблюдении температурного режима их хранения (не выше 8°) по срокам годности практически не уступают другим видам В. Недостатком некоторых живых В. (оспенная В., антирабическая) является возможность появления у отдельных привитых индивидуумов неврологических осложнений (см. Поствакцинальные осложнения). Эти поствакцинальные осложнения весьма редки, и их удается в значительной мере избежать при строгом соблюдении технологии приготовления и правил применения названных В.
Убитые вакцины
Убитые В. получают инактивацией патогенных бактерий и вирусов, применяя для этого различные воздействия на культуры физ. или хим. характера. Соответственно фактору, обеспечивающему инактивацию живых микробов, готовят гретые В., формалиновые, ацетоновые, спиртовые, феноловые. Изучаются также другие способы инактивации, напр, ультрафиолетовыми лучами, гамма-излучением, воздействием перекиси водорода и другими хим. агентами. Для получения убитых В. применяют высокопатогенные, полноценные в антигенном отношении штаммы соответствующих видов возбудителей.
По своей эффективности убитые В., как правило, уступают живым, однако некоторые из них имеют достаточно высокую иммуногенность, предохраняя привитых от заболевания или уменьшая тяжесть течения последнего.
Т. к. инактивация микробов упомянутыми выше воздействиями нередко сопровождается значительным снижением иммуногенности В. в связи с денатурацией антигенов, предпринимались многочисленные попытки применения щадящих способов инактивации с прогреванием микробных культур в присутствии сахарозы, молока, коллоидных сред. Однако полученные такими способами АД-вакцины, гала-вакцины и др., не показав существенных преимуществ, не вошли в практику.
В отличие от живых В., большинство которых применяется путем однократной прививки, убитые В. требуют двух или трех прививок. Так, напр., убитую брюшнотифозную В. вводят подкожно дважды с интервалом 25- 30 дней и третью, ревакцинирующую, инъекцию проводят через 6-9 мес. Вакцинацию против коклюша убитой В. проводят трехкратно, внутримышечно, с интервалом 30- 40 дней. Холерную В. вводят дважды.
В СССР применяют убитые В. против брюшного тифа и паратифа В, против холеры, коклюша, лептоспирозов и клещевого энцефалита. В зарубежной практике применяют также убитые В. против гриппа, полиомиелита.
Основным способом введения убитых В. являются подкожные или внутримышечные инъекции препарата. Изучаются методы энтеральной вакцинации против брюшного тифа и холеры.
Преимуществом убитых В. является относительная простота их приготовления, поскольку для этого не требуются специально и длительно изученные вакцинные штаммы, а также сравнительно большая стабильность при хранении. Существенным недостатком этих препаратов является слабая иммуногенность, необходимость повторных инъекций в курсе вакцинации, ограниченность способов аппликации В.
Химические вакцины
Химические В., применяемые для профилактики инфекционных болезней, не вполне соответствуют своему принятому в практике названию, т. к. не являются каким-либо химически определенным веществом. Эти препараты представляют собой антигены или группы антигенов, извлеченные из микробных культур тем или иным способом и в той или иной степени очищенные от балластных неиммунизирующих веществ. В одних случаях извлеченные антигены являются в основном бактерийными эндотоксинами (брюшнотифозная хим. В.), получаемыми обработкой культур способами, сходными с методом получения так наз. полных антигенов Буавена. Другие химические В. представляют собой «протективные антигены», продуцируемые нек-рыми микробами в процессе жизнедеятельности в организме животных или в специальных питательных средах при соответствующих режимах культивирования (напр., протективный антиген сибиреязвенных бацилл).
Из числа химических В. в СССР применяется брюшнотифозная В. в сочетании с хим. паратифозной В вакциной или со столбнячным анатоксином. Для вакцинации детских контингентов применяют другую хим. вакцину - Vi-антиген брюшнотифозных микробов (см. Vi-антиген).
В зарубежной практике имеет ограниченное применение для иммунизации некоторых профессиональных контингентов хим. сибиреязвенная В., представляющая собой протективный антиген сибиреязвенных бацилл, получаемый в специальных условиях культивирования и сорбированный на геле гидроокиси алюминия. Двукратное введение этой В. создает у привитых иммунитет длительностью 6-7 мес. Повторные ревакцинации приводят к выраженным аллергическим реакциям на прививки.
Применяют перечисленные В. для профилактики, т. е. для иммунизации здоровых людей с целью выработки ими иммунитета против того или иного заболевания (см. табл.). Некоторые В. применяют также при терапии хрон, инфекционных болезней с целью стимуляции выработки организмом более выраженного специфического иммунитета (см. Вакцинотерапия). Напр., при лечении хрон, бруцеллеза применяют убитую В. (в отличие от живой профилактической В.). М. С. Маргулис, в. д. Соловьев и А. К. Шубладзе предложили лечебную В. против множественного (рассеянного) склероза. Промежуточное положение между профилактическими и лечебными В. занимает антирабическая В., которую применяют для предупреждения заболевания бешенством лиц, зараженных и находящихся в инкубационном периоде. С лечебной целью применяют также аутовакцину (см.), приготовляемую путем инактивации культур микробов, выделенных от больного.
|
Исходный материал, принципы изготовления |
Способ применения |
Эффективность |
Реактогенность |
||
|---|---|---|---|---|---|
|
Сухая антирабическая вакцина типа Ферми |
Vaccinum antirabicum siccum Fermi |
Фиксированный вирус бешенства, штамм «Москва», пассированный в мозге барана и инактивированный фенолом |
Подкожно |
Эффективна |
Умеренно реактогенна |
|
Инактивированная культуральная антирабическая вакцина Института полиомиелита и вирусных энцефалитов АМН СССР, сухая |
Vaccinum antirabicum inactivatum culturale |
Фиксированный вирус бешенства, штамм «Внуково-32», выращенный на первичной культуре ткани почек сирийского хомяка, инактивированный фенолом или ультрафиолетом |
Подкожно |
Эффективна |
Слабо реактогенна |
|
Бруцеллезная живая сухая вакцина |
Vaccinum brucellicum vivum (siccum) |
Агаровая культура вакцинного штамма Br. abortus 19-ВА, подвергнутая лиофилизации в сахарозожелатиновой среде |
Эффективна |
Слабо реактогенна |
|
|
Брюшнотифозная спиртовая вакцина, обогащенная Vi-антигеном |
Vaccinum typhosum spirituosum dodatum Vi-antigenum S.typhi |
Бульонная культура штамма Ту2 4446, убитая, обогащенная Vi-ан-тигсном |
Подкожно |
Эффективна |
Умеренно реактогенна |
|
Химическая сорбированная тифозно-паратифозно-столбнячная вакцина (TABte), жидкая |
Vaccinum typhoso-paratyphoso tetanicum chemicum adsorptum |
Смесь полных антигенов бульонных культур возбудителей брюшного тифа и паратифов А и В с фильтратом бульонной культуры С1, tetani, обезвреженной формалином и теплом |
Подкожно |
Эффективна |
Умеренно реактогенна |
|
Живая гриппозная вакцина для интраназального применения, сухая |
Vaccinum gripposum vivum |
Аттенуированные вакцинные штаммы вируса гриппа А2, В, выращенные в куриных эмбрионах |
Интраназально |
Умеренно эффективна |
Слабо реактогенна |
|
Живая гриппозная вакцина для перорального введения, сухая |
Vaccinum gripposum vivum perorale |
Аттенуированные вакцинные штаммы вируса гриппа А2, В, выращенные на культуре клеток почек куриных эмбрионов |
Перорально |
Умеренно эффективна |
Ареактогенна |
|
Очищенный дифтерийный анатоксин, адсорбированный на гидроокиси алюминия (АД-анатоксин) |
Anatoxinum diphthericum purificatum aluminii hydroxydo adsorptum |
Фильтрат бульонной культуры Corynebacterium diphtheriae PW-8, обезвреженный формалином и теплом и сорбированный на гидроокиси алюминия |
Подкожно |
Высокоэффективен |
Слабо реактогенен |
|
Очищенный дифтерийностолбнячный анатоксин, адсорбированный на гидроокиси алюминия (АДС-анатоксин) |
Anatoxinum diphthericotetanicum (purificatum aluminii hydroxydo adsorptum) |
Фильтрат бульонных культур Corynebacterium diphtheriae PW-8 и С1, tetani, обезвреженный формалином и теплом и сорбированный на гидроокиси алюминия |
Подкожно |
Высокоэффективен |
Слабо реактогенен |
|
Адсорбированная коклюшно-дифтерийностолбнячная вакцина (АКДС-вакцина) |
Vaccinum pertussico-diphthericotetanicum aluminii hydroxydo adsorptum |
Смесь культур не менее 3 коклюшных штаммов основных серотипов, убитых формалином или мертиолятом, и фильтратов бульонных культур Corynebacterium diphtheriae PW-8, и Cl. tetani, обезвреженных формалином |
Подкожно или внутримышечно |
Высокоэффективна в отношении дифтерии и столбняка, эффективна в отношении коклюша |
Умеренно реактогенна |
|
Вакцина коревая живая, сухая |
Vaccinum morbillorum vivum |
Аттенуированный вакцинный штамм «Ленинград-16», выращенный на культуре клеток почек новорожденных морских свинок (ПМС) или культуре клеток эмбрионов японских перепелок (ФЭП) |
Подкожно или внутрикожно |
Высокоэффективна |
Умеренно реактогенна |
|
Инактивированная культуральная вакцина против клещевого энцефалита человека, жидкая или сухая |
Vaccinum culturale inactivatum contra encephalitidem ixodicam hominis |
Штаммы «Пан» и «Софьин», культивируемые на клетках куриных эмбрионов и инактивированные формалином |
Подкожно |
Эффективна |
Слабо реактогенна |
|
Лептоспирозная вакцина, жидкая |
Vaccinum leptospirosum |
Культуры не менее 4 серотипов патогенных лептоспир, выращенные на диет, воде с добавлением сыворотки кролика и убитые нагреванием |
Подкожно |
Эффективна |
Умеренно реактогенна |
|
Оспенная вакцина, сухая |
Vaccinum variolae |
Аттенуированные штаммы Б-51, Л-ИВП, ЭМ-63, культивируемые на коже телят |
Накожно и внутрикожно |
Высокоэффективна |
Умеренно реактогенна |
|
Полиомиелитная пероральная живая вакцина типов I, II, III |
Vaccinum poliomyelitidis vivum perorale, typus I, II, III |
Аттенуированные штаммы Сейбина I, II, III типов, культивируемые на первичной культуре клеток почки зеленой мартышки. Вакцина выпускается как в жидкой форме, так и в форме конфет-драже (антиполиодраже) |
Перорально |
Высокоэффективна |
Ареактогенна |
|
Сибиреязвенная живая сухая вакцина (СТИ) |
Vaccinum anthracicum STI (siccum) |
Агаровая споровая культура вакцинного бескапсульного штамма СТИ-1, лиофилизированная без стабилизатора |
Накожно или подкожно |
Эффективна |
Слабо реактогенна |
|
Очищенный столбнячный анатоксин, адсорбированный на гидроокиси алюминия (АС-анатоксин) |
Anatoxinum tetanicum purificatum aluminii hydroxydo adsorptum |
Фильтрат бульонной культуры С1, tetani, обезвреженный формалином и теплом и сорбированный на гидроокиси алюминия |
Подкожно |
Высокоэффективен |
Слабо реактогенен |
|
Анатоксин стафилококковый очищенный адсорбированный |
Anatoxinum staphylococcicum purificatum adsorptum |
Фильтрат бульонной культуры токсигенных штаммов стафилококка 0-15 и ВУД-46, обезвреженный формалином и сорбированный на гидроокиси алюминия |
Подкожно |
Эффективен |
Слабо реактогенен |
|
Сухая живая комбинированная сыпнотифозная вакцина Ε (сухая ЖКСВ-Е) |
Vaccinum combinatum vivum (siccum) E contra typhum exanthematicum |
Смесь аттенуированного вакцинного штамма риккетсий Провацека (Мадрид-Е), культивируемого в желточном мешке куриного эмбриона и растворимого антигена риккетсий Провацека штамма «Брейнль» |
Подкожно |
Эффективна |
Умеренно реактогенна |
|
Туберкулезная сухая вакцина БЦЖ для внутрикожного применения |
Vaccinum BCG ad usum intracutaneum (siccum) |
Культура вакцинного штамма БЦЖ, выращенная на синтетической среде и лиофилизированная |
Внутрикожно |
Высокоэффективна |
Умеренно реактогенна |
|
Холерная вакцина |
Vaccinum cholericum |
Агаровые культуры холерного вибриона и «Эль-Тор», серотипов «Инаба» и «Огава», убитые нагреванием или формалином. Вакцина выпускается в жидком или сухом виде |
Подкожно |
Слабо эффективна |
Умеренно реактогенна |
|
Туляремийная живая сухая вакцина |
Vaccinum tularemicum vivum siccum |
Агаровая культура вакцинного штамма № 15 Гайского линии НИИЭГ, лиофилизированная в Саха розо-желатиновой среде |
Накожно или внутрикожно |
Высокоэффективна |
Слабо реактогенна |
|
Чумная живая сухая вакцина |
Vaccinum pestis vivum siccum |
Агаровая или бульонная культура вакцинного штамма ЕВ линии НИИЭГ, лиофилизированная в сахарозо-желатиновой среде |
Подкожно или накожно |
Эффективна |
Умеренно или слабо реактогенна в зависимости от способа введения |
Методы приготовления
Методы приготовления В. разнообразны и определяются как биол, особенностями микробов и вирусов, из которых готовят В., так и уровнем технической оснащенности вакцинного производства, к-рое все в большей степени приобретает промышленный характер.
Бактерийные В. готовят путем выращивания соответствующих штаммов на различных, специально подобранных, жидких пли плотных (агаровых) питательных средах. Анаэробные микробы - продуценты токсинов, выращиваются в соответствующих условиях. В технологии производства многих бактерийных В. все больше отходят от лабораторных условий культивирования в стеклянных емкостях, используя большого объема реакторы и культиваторы, позволяющие одновременно получать микробную массу на тысячи и десятки тысяч прививочных доз вакцины. В значительной степени механизируются способы концентрации, очистки и другие приемы обработки микробной массы. Все живые бактериальные В. в СССР выпускают в форме лиофилизированных препаратов, высушенных из замороженного состояния в глубоком вакууме.
Риккетсиозные живые В. против Ку-лихорадки и сыпного тифа получают путем культивирования соответствующих вакцинных штаммов в развивающихся куриных эмбрионах с последующей обработкой полученных взвесей желточных мешков и лиофилизацией препарата.
Вирусные вакцины готовятся при использовании следующих методов: Производство вирусных вакцин на первичных клеточных культурах почечной ткани животных. В различных странах используют для производства вирусных В. культуры трипсинизированных почечных клеток обезьян (полиомиелитные В.), морских свинок и собак (В. против кори, краснухи и некоторых других вирусных инфекций), сирийских хомяков (антирабическая В.).
Производство вирусных вакцин на субстратах птичьего происхождения. На производстве ряда вирусных В. успешно используются куриные эмбрионы и их клеточные культуры. Так, на куриных эмбрионах или в клеточных культурах куриных эмбрионов готовят В. против гриппа, паротита, оспы, желтой лихорадки, кори, краснули, клещевого и японского энцефалитов и другие В., используемые в ветеринарной практике. Для производства некоторых вирусных В. пригодны также эмбрионы и тканевые культуры иных птиц (напр., перепелок и уток).
Производство вирусных вакцин на животных. Примерами являются производство оспенной В. (на телятах) и производство антирабической В. (на овцах и сосунках белых крыс).
Производство вирусных вакцин на диплоидных клетках человека. В ряде стран на производстве вирусных В. (против полиомиелита, кори, краснухи, оспы, бешенства и некоторых других вирусных инфекций) применяется штамм WI-38 диплоидных клеток, полученных из легочной ткани эмбриона человека. Основными преимуществами использования диплоидных клеток являются: 1) широкий спектр чувствительности этих клеток к различным вирусам; 2) экономичность производства вирусных В.; 3) отсутствие в них посторонних побочных вирусов и других микроорганизмов; 4) стандартность и стабильность клеточных линий.
Усилия исследователей направлены на выведение новых штаммов диплоидных клеток, в т. ч. пропс-ходящих из тканей животных, с целью дальнейшей разработки и внедрения в широкую практику доступных, безопасных и экономичных методов производства вирусных В.
Следует особо подчеркнуть, что любая В., предложенная для широкого применения, должна удовлетворять требованиям к частоте и тяжести побочных реакций и осложнений, связанных с вакцинацией. Важность этих требований признается ВОЗ, к-рая проводит совещания экспертов, формулирующих все требования к биол, препаратам и подчеркивающих, что безопасность препарата - главное условие при разработке В.
Производство В. в СССР сосредоточено преимущественно в крупных ин-тах вакцин и сывороток.
Качество В., выпускаемых в СССР, находится под контролем как местных контрольных органов при институтах-изготовителях. так и Государственного научно-исследовательского института стандартизации и контроля медицинских биол, препаратов им. Л. А. Тарасевича. Технология производства и контроль, а также методы применения В. регламентируются Комитетом вакцин и сывороток М3 СССР. Большое внимание уделяется стандартизации выпускаемых для практического применения В.
Вновь разрабатываемые и предлагаемые для практики В. проходят разностороннюю апробацию в Государственном институте им. Тарасевича, материалы испытаний рассматриваются Комитетом вакцин и сывороток, а при внедрении новых В. в практику соответствующая документация на них утверждается М3 СССР.
Помимо разностороннего изучения новых В. в экспериментах на животных, после установления безвредности препарата его изучают в отношении реактогенности и иммунологической эффективности в ограниченном опыте иммунизации людей. Иммунологическую эффективность В. оценивают по серологическим изменениям и кожным аллергическим пробам, наступающим у привитых людей в определенные сроки наблюдений. Следует, однако, учитывать, что эти показатели далеко не во всех случаях могут служить критериями действительной иммуногенности В., т. е. ее способности защитить привитого от заболевания соответствующей инфекционной болезнью. Поэтому глубокому и тщательному изучению подлежат коррелятивные связи между серо-аллергическими показателями у вакцинированных и наличием действительного поствакцинального иммунитета, выявляемого в опытах на животных. В создании отечественных оригинальных В. большое значение имели работы М. А. Морозова, Л. А. Тарасевича, H. Н. Гинсбурга, Н.Н. Жукова-Вережникова, Н. А. Гайского и Б. Я. Эльберта, П. А. Вершиловой, П. Ф. Здродовского, А. А. Смородинцева, В. Д. Соловьева, М. П. Чумакова, О. Г. Анджапаридзе и др.
Библиография: Безденежных И. С. и др. Практическая иммунология, М., 1969; Гинсбург H. Н. Живые вакцины (История, элементы теории, практика), М., 1969; Здродовский П. Ф. Проблемы инфекции, иммунитета и аллергии, М., 1969, библиогр.; Кравченко А. Т., Салтыков Р. А. и Резепов Ф. Ф. Практическое руководство по применению биологических препаратов, М., 1968, библиогр.; Методическое руководство по лабораторной оценке качества бактерийных и вирусных препаратов (Вакцины, анатоксины, сыворотки, бактериофаги и аллергены), под ред. С. Г. Дзагурова и др., М., 1972; Профилактика инфекций живыми вакцинами, под ред. М. И. Соколова, М., 1960, библиогр.; Рогозин И. И. и Беляков В. Д. Ассоциированная иммунизация и экстренная профилактика, Д., 1968, библиогр.
В. М. Жданов, С. Г. Дзагуров, Р. А. Салтыков.
Эта вакцина относится к числу живых вакцин, так как готовится на основе аттенуированного штамма чумного микроба EV, выделенного в 1926 г. на острове Мадагаскар от мальчика, погибшего от бубонной чумы. Вирулентность этого микроба удалось резко снизить путем пассажей на агаровых средах при температуре 18-20°С с ежемесячными пересевами в течение 5 лет. При изготовлении вакцины маточная культура вакцинного штамма, хранящегося в лиофилизированном состоянии в диапазоне температур -25°С (предпочтительно) + 6°С, после ее анимализации (пассажа через организм морской свинки) и последующей подготовки - тренажа на жидких и плотных питательных средах и проверки полноценности ее свойств - засевается на большие объемы плотной питательной среды, например, агар Хоттингера в кюветах, и выращивается в специальных автоматических культиваторах микробов (AKM-III). После инкубирования при температуре 28°С в течение 40-42 ч выросшую на поверхности среды культуру смывают средой высушивания - раствором, содержащим сахарозу, желатин, глютамат натрия, тиомочевину и пептон, взвесь бактерий EV переносят в бутыли, разводят средой высушивания под контролем оптического стандарта мутности до концентрации 60-80 млрд. микробов в 1 мл, разливают в ампулы и лиофилизируют.
Наряду с этим возможно получение биомассы вакцинного штамма на жидких средах путем его выращивания в реакторах-культиваторах. В этом случае посевную культуру вносят в 100 л стерильного бульона Хоттингера и инкубируют в условиях непрерывной аэрации и перемешивания при 28-30°С вплоть до начала стационарной фазы роста микробов, когда их число достигает 30-50 млрд. в 1 мл и перестает возрастать. Обычно это наступает после 18-24 ч выращивания. С целью ускорения темпов роста микробов их подкармливают 40% раствором глюкозы. Затем реактор охлаждают, бульонную культуру помещают в рефрижератор при 0-6°С не более чем на 48 ч, надосадочную жидкость сливают, осевшую массу микробов разводят средой высушивания до концентрации 80 млрд. микробов в 1 мл, разливают в ампулы и лиофилизируют.
После этого осуществляют контроль высушенной вакцины на:
Специальную стерильность;
Концентрацию микробов;
Число жизнеспособных микробов;
Количество человеко-доз;
Физические свойства;
Безвредность;
Иммуногенность.
Если результаты контрольных исследований удовлетворяют перечисленным требованиям, вакцину используют для прививок против чумы .
Прививки живой чумной вакциной проводят подкожно шприцем или с помощью безыгольного инъектора. Детей в возрасте до 7 лет, беременных и престарелых прививают накожно, подобно тому как прививают против оспы .
Детей, подростков и взрослых прививают однократно разными дозами, которые указаны в инструкции по применению вакцины.
Срок годности вакцины при условии ее правильной транспортировки (при температуре не выше 10°С) и хранения в сухом затемненном месте при температуре от 1 до 6°С - до 3 лет. Следует помнить, что в случае транспортировки и хранения вакцины при 20-25°С срок ее годности не превышает 2 мес.
Вакцина чумная живая сухая
Инструкция по медицинскому применению - РУ № ЛСР-008997/09
Дата последнего изменения: 27.04.2017
Лекарственная форма
Таблетки для рассасывания
Состав
Вакцина чумная живая, таблетки для рассасывания, представляет собой лиофилизированную живую культуру вакцинного штамма Yersinia pestis EV линии НИИЭГ (40 млрд. живых микробных клеток в таблетке), стабилизатор: декстрин (6 мг в таблетке), кислота аскорбиновая (6 мг в таблетке), лактоза (60 мг в таблетке), тиомочевина (6 мг в таблетке), наполнитель: ванилин (2 мг в таблетке), глюкоза медицинская (0,44 г в таблетке), какао порошок (11,4 мг в таблетке), кальция стеарат (12 мг в таблетке), крахмал картофельный (11,4 мг в таблетке), ментол (2,2 мг в таблетке), сахарин (1,1 мг в таблетке).
В одной таблетке содержится - (40±10) х10 9 живых микробов.
Описание лекарственной формы
Таблетка светло-коричневого цвета правильной круглой формы с цельными краями, ровной и плоской поверхностью. Имеет запах какао, ванилина и ментола.
Фармакологические (иммунобиологические) свойства
Вакцина вызывает у привитых развитие иммунитета к чуме длительностью до 1 года.
Показания
Профилактика чумы.
Прививкам подлежит население с 14-летнего возраста, проживающее на энзоотичных по чуме территориях; лица, работающие с живыми культурами возбудителя чумы, зараженными лабораторными животными, проводящие исследование материала, подозрительного на зараженность возбудителем чумы.
Противопоказания
1. Острые инфекционные и неинфекционные заболевания, хронические заболевания в стадии обострения - прививки проводят не ранее, чем через 1 мес после выздоровления (ремиссии).
2. Первичные и вторичные иммунодефициты. При лечении стероидами, антиметаболитами, химио- и рентгенотерапии - прививки проводят не ранее, чем через 6 мес после окончания лечения.
3. Системные заболевания соединительной ткани.
4. Злокачественные новообразования и злокачественные болезни крови.
5. Болезни эндокринной системы.
6. Аллергические заболевания (бронхиальная астма, анафилактический шок, отек Квинке в анамнезе).
7. Беременность и период лактации.
В каждом отдельном случае при заболеваниях, не содержащихся в настоящем перечне, вакцинация проводится лишь по разрешению соответствующего врача-специалиста.
С целью выявления противопоказаний врач (фельдшер) в день прививки проводит опрос и осмотр прививаемого с обязательной термометрией.
Способ применения и дозы
Одна прививочная доза составляет одну таблетку. Вакцинацию проводят однократно путем приема одной таблетки, которую необходимо активно рассасывать или тщательно разжевывать в течение 5-7 мин. Проглатывать таблетку целиком ЗАПРЕЩАЕТСЯ!
После приема таблетки в течение 30 мин не рекомендуется пить, принимать пищу, курить.
Ревакцинацию осуществляют через один год (при неблагоприятной эпидемической обстановке - через 6 мес) той же дозой.
Перед применением вакцины контролируют целостность упаковки, наличие этикеток на банках, внешний вид таблеток. Непригодным является препарат в емкости с нарушенной целостностью, с изменившимся внешним видом (таблетки с неровными краями, трещинами и пятнами), с истекшим сроком годности, без этикеток или с недостающими сведениями на них.
Побочные действия
Прививки вакциной могут сопровождаться как местными, так и общими реакциями.
Местные реакции проявляются в виде ограниченной, слабовыраженной гиперемии слизистой ротовой полости в области миндалин и незначительной боли, ощущаемой при глотании. Местные реакции возникают на 1-3 сут после вакцинации и держатся в течение 2-3 сут.
Общие реакции могут быть слабыми, средними и сильными и сопровождаются повышением температуры тела, недомоганием, головной болью, слабостью, болями в мышцах.
Слабая реакция - повышение температуры тела до 37,1-37,5 °С продолжительностью 1-2- сут, должна наблюдаться не более, чем в 3% случаев.
Средняя - повышение температуры тела до 37,6-38,5 °С продолжительностью 1-2- сут, полная утрата трудоспособности не более 1 сут. Средняя реакция должна наблюдаться не более, чем в 2 % случаев.
Сильная - повышение температуры тела свыше 38,5 °С продолжительностью l-3- сут, полная утрата трудоспособности более 1 сут. Сильная реакция должна наблюдаться не более, чем в 1% случаев.
Передозировка
Взаимодействие
Допускается одновременная пероральная вакцинация взрослых против чумы и накожная против бруцеллеза и туляремии на разных участках наружной поверхности верхней трети плеча.
Вакцина чувствительна к антибиотикам, в связи с чем иммунизация на фоне применения антибиотиков, не допускается.