Выполнила: студентка 121-III СД
Бычкова Анна
Проверил преподаватель по хирургии:
Абдурасулов Дмитрий Евгеньевич
2016 год
Г.Нижний Новгород
Асептика
- совокупность методов и приёмов работы,направленных на предупреждение попадания инфекции
в рану, в организм больного, создание безмикробных,
стерильных условий для хирургической работы путём
использования организационных мероприятий, активных
обеззараживающих химических веществ, а также
технических средств и физических факторов.
История асептики
В 1885 году русский хирург М.С. Субботинвпервые оборудовал специальную
операционную, в которой производил
стерилизацию перевязочного материала,
чем по существу и положил начало
новому методу, названному асептикой.
В последующие годы Э.Бергман детально
разработал и предложил метод асептики.
Используя открытия Л. Пастера,
совместно со своим учеником
Шиммельбушем он обосновал методику
уничтожения микробов на всем, что
соприкасается с операционной раной. В
связи этим Э. Бергман считается
основателем асептики.
Принципы асептики
Следует особо подчеркнуть значение организационныхмероприятий: именно они становятся определяющими. В
современной асептике сохранили своё значение два
основных её принципа:
всё, что соприкасается с раной, должно быть
стерильно;
всех хирургических больных необходимо разделять на
два потока: «чистые» и «гнойные».
Экзогенная инфекция
Инфекцию, попадающую в рану из внешней среды,называют экзогенной. Основные её источники: воздух с
частицами пыли, на которых оседают микроорганизмы;
выделения из носоглотки и верхних дыхательных путей
больных, посетителей и медперсонала; раневое
отделяемое из гнойных ран, различные бытовые
загрязнения.
Эндогенная инфекция
Инфекцию, попадающую в рану из организмасамого больного,
называют эндогенной. Основные её источники:
кожа пациента, внутренние органы,
патологические очаги.
Профилактика воздушно-капельной инфекции
1. Изолированное от других подразделений лечебного учрежденияразмещение операционного блока с прохождением в него персонала
через специальное помещение с душевыми, с полной сменой белья.
2. Строгое соблюдение правил ношения операционной одежды.
3. Ограничение числа лиц находящихся в операционной и по
возможности ограничение передвижений.
4. Подача воздуха в операционные через систему кондиционеров,
оснащенных бактериальными фильтрами. Возможно использование
передвижных циркуляционных воздухоочистителей, которые
производят 40-кратный обмен воздуха в час.
5. Постоянное облучение отраженными ультрафиолетовыми лучами
(бактерицидными лампами) всех помещений операционного блока и
создание ультрафиолетового тамбура при входе в операционную.
Дезинфекция воздуха операционной бактерицидными лампами в
период между операциями.
6. Покрытие стен, потолков и полов операционных
водостойкими материалами, гладкими, без щелей,
допускающих многократную дезинфекцию.
7. Влажная уборка операционной с использованием 3%
раствора перекиси водорода и 0,5% раствора моющего
средства 8. Поддерживание в операционной
температуры на уровне 22 - 25°С при влажности 50%.
9. Систематическая дезинфекция наркозных аппаратов
в специальных дезинфекционных камерах химическим
методом. Выведение выдыхаемого больным воздуха из
наркозного аппарата за пределы операционной.
10. Предоперационная санация полости рта у планово
оперируемых больных.
Профилактика воздушно- капельной инфекции
11. Систематическое обследование у персоналаверхних дыхательных путей на носительство
патогенных штаммов бактерий и лечение
бактерионосителей.
12. Обязательное ношение в операционной масок.
Лучше использовать одноразовые маски из
специальной бумажной ткани или четырехслойные
марлевые маски, вымоченные перед стерилизацией в
растворе антисептика (хлоргексидин, роккал).
13. Для предупреждения проникновения бактерий
через халат, особенно при увлажнении последнего,
использовать для изготовления операционных
халатов и операционного белья хирургов нетканые
материалы, непроницаемые для организмов.
10. Профилактика контактной инфекции
Достигается стерилизациейоперационного белья,
перевязочного материала,
хирургических инструментов,
подготовкой к операции
хирургов, подготовкой к
операции операционного поля.
Стерилизация – мероприятие,
обеспечивающее полное
уничтожение микробов и спор.
11. Профилактика внутрибольничной инфекции
Внутрибольничная инфекция – заболевания илиосложнения, развитие которых связано с
инфицированием больного во время нахождения
его в хирургическом стационаре.
Пути распространения: контактно от больного к
больному, от персонала и посетителей к
больному и наоборот.
Среди форм внутрибольничной инфекции чаще
встречаются: инфекция мочевых путей (40%),
раневая (25%), дыхательной системы (16%),
септицемия (3-5%).
12. Профилактика внутрибольничной инфекции
В связи с этим мероприятия основные мероприятия поборьбе с внутрибольничной инфекцией включают в
себя:
1. Сокращение предоперационного койко-дня;
2. Сокращение длительности послеоперационного
периода, ранняя выписка пациентов с контролем на
дому;
3. Разделение потоков больных, гнойных и чистых
палат, отделений, операционных и оборудования;
4. Предупреждение перекрестного инфицирования:
внедрение одноразового белья, полотенец, перчаток;
5. Дезинфекция рук персонала и врачей перед прямым
контактом с больным и после него;
6. Дезинфекция матрацев, подушек, одеял и др.;
7. Рациональное назначение антибиотиков;
13. Стерилизация
(sterilis - бесплодный,лат.) - полное освобождение какоголибо предмета от микроорганизмов и
их спор путём воздействия на него
физическими или химическими
факторами.
Физические методы:
Стерилизация паром под давлением
(автоклавирование)
Стерилизация горячим воздухом (сухим
жаром)
Ионизирующая стерилизация
Химические методы:
Газовая стерилизация
Стерилизация растворами
антисептиков
Механические методы
14. Автоклавирование
Стерилизирующим фактором является тепловой удар,приводящий к коагуляции белка бактерий, и
непосредственное действие сухого пара на бактерии,
при отсутствии воздуха путем гидратирования и
гидролиза белков. Паровые стерилизаторы
обеспечивают стерилизацию изделий из тканей
(давление 2,0 кгс/см; температура 134оС, время 20
мин.), стерилизацию растворов (давление 1,0 кгс/см;
температура 120оС, время 30 мин.), стерилизацию
резиновых изделий (давление 0,7 кгс/см;
температура 120оС, время 20 мин.). 1 кгс/см равен
примерно 1 атмосфере.
15. Сухожаровая стерилизация
Сухожаровая стерилизация. В сухожаровые стерилизаторыинструменты помещают либо в специальных
крафтпакетах, либо на специальном металлическом
поддоне, которым оснащен аппарат, либо на керамике.
Температура 110-300 градусов, время стерилизации – от
15 до 60 минут. В любой термостерилизатор можно
класть инструменты только абсолютно сухими, нельзя
вынимать инструменты, не дав им остыть в
стерилизаторе.
16. Газовая стерилизация
Для газовой стерилизации наибольшее признание получилиокись этилена, смесь окиси метилена с бромидом метила и
формальдегид. Окись этилена и ее пары обладают высокими
бактерицидными действиями. Стерильность объектов
наступает через 2-4 часа. Смесь окиси этилена и бромида
метила в соотношении 1:1,4 применяется для стерилизации
медицинских изделий, изготовленных из термолабильных
материалов (резина, пластмассы, оптические приборы).
Бромид метила значительно снижает взрывоопасность смеси.
Формальдегид вводится в стерилизационную камеру вместе с
насыщенным водяным паром, температура стерилизации 5080оС. Газовая стерилизация позволяет стерилизовать сложные
аппараты и приборы, не разбирая их на части (аппарат
искусственного кровообращения, наркозные аппараты,
аппараты искусственной вентиляции легких и т.п.).
17. Стерилизация растворами антисептиков
Бианола 20% илиГигасепта ФФ 10%,
используются однократно,
время выдержки10 ч.
Лизоформина-3000 8% или
Деконекса 50 Плюс 8%,
используются однократно,
время выдержки 1 ч.
Сайдекса, можно
использовать не
одноразово в течение 14
суток, время выдержки 3-5
ч.
18. Стерилизация ионизирующим излучением
Используют бактерицидные действия гаммалучей (радиоактивные изотопы кобальт-60 ицезий-137). Стерилизация проникающей
радиацией осуществляется в специально
созданных установках, с мощной защитой от
проникающей радиации, специально обученным
персоналом. Применяется на предприятиях
медицинской промышленности,
заготавливающих стерильные материалы
длительного хранения.
19. Стерилизация хирургических инструментов
Предстерилизационная подготовка хирургических инструментов,бывших в употреблении, осуществляется следующим образом:
1. Бывшие в употреблении, но не инфицированные инструменты моют
проточной водой щетками в течение 5 минут, затем замачивают в
растворе А (пергидроль - 20,0, ПАВ "Астра" - 5,0; вода - 975 мл.)
при 50 0С – на 15-20 минут.
2. Инструменты, загрязненные гноем или кишечным содержимым,
помещают в 5% раствор лизола на 30 минут.
3. Инструменты и шприцы после операции у больного с анаэробной
инфекцией замачивают в 6 % растворе перекиси водорода + 0,5 %
раствор ПАВ "Астра" на 1 час, затем кипятят 90 минут.
В настоящее время с целью профилактики ВИЧ-инфекции все
инструменты после использования перед прохождением обычной
предстерилизационной подготовки должны быть замочены в 3% рре хлорамина в течение 60 минут или в 6% р-ре перекиси водорода в
течение 90 минут (приказ № 86 от 30.08.89 МЗ СССР).
20. Стерилизация нережущих металлических предметов
1. Стерилизации в сухожаровом шкафупри t - 180-200 0 C в течение 60 минут.
2. Автоклавирования при давлении в 2
Атм (132,9 град. С.) в течение 20
минут.
3. Кипячения в дистиллированной воде с
добавлением натрия гидрокарбоната
(20 гр. на 1 литр воды) – 45 минут.
Инструменты после операций по поводу
анаэробной инфекции и в группе
риска по гепатиту или ВИЧ-инфекции
кипятить нельзя.
21. Стерилизация режущих и колющих инструментов
Режущие и колющие инструменты кипятят в течение 3-хминут без добавления гидрокарбоната натрия, затем
погружают в 96 % этанол на 2 - 3 часа.
Кипячение шприцов осуществляется в разобранном виде в
бидистиллированной воде в течение 45 минут.
Стеклянная часть шприца при этом обертывается
марлей.
Согласно приказу МЗ N 720 от 31.07.78 инструментарий,
используемый во время операции, рекомендуется
стерилизовать в сухожаровых шкафах при температуре
180 0С в течение 1 часа. В таких же условиях должны
стерилизоваться и режущие инструменты, что приводит
к некоторому снижению их остроты, но обеспечивает
абсолютную стерильность.
22. Стерилизация одноразовых инструментов
Одноразовые инструменты (пинцеты, зажимы,зонды, скальпели) стерилизуются с помощью
ионизирующего излучения в заводских
условиях.
23. Стерилизация оптических приборов
Основным методом стерилизации оптических инструментов,требующих наиболее щадящей обработки с исключением
нагревания, является газовая стерилизация. Этим способом
обрабатываются все инструменты для лапароскопических и
торакоскопических вмешательств, что связано с их сложным
устройством и дороговизной.
Для этого используется:
· стерилизация окисью этилена при концентрации газа 555 мг/л в
течение 16-16 часов;
· стерилизация в формалиновой камере, на дно которой кладут
таблетки формальдегида, в течение 48 часов.
При стерилизации фиброгастроскопов, холедохоскопов,
колоноскопов применяется замачивание в 2% р-ре
глютарового альдегида (активатор) и гипохлорида натрия
(ингибитор коррозии) в течение 45-180 минут.
24. Стерилизация перевязочного материала и белья
Перевязочный материал и белье стерилизуют вавтоклаве при давлении 2 атм. (132,9 0С.) в
течение 20 минут.
Белье и материал стерилизуются в биксах или
матерчатых двухслойных мешках.
25. Виды укладки в стерилизационный бикс
а) универсальная: укладывают операционное белье иперевязочный материал для одной небольшой
типичной операции.
б) целенаправленная: укладывают операционное
белье и перевязочный материал для определенного
вида операций.
в) видовая: укладывают определенный вид белья
или перевязочного материала.
26. Стерилизация шовного материала
В настоящее время основным способом стерилизации шовногоматериала является лучевая стерилизация в заводских
условиях. Шовный материал стерилизуется и в упаковке
поступает в лечебные учреждения.
Классические методы стерилизации шелка (метод Кохера) и
кетгута (метод Ситковского в парах йода, методы Губарева и
Клаудиуса в спиртовом и водном растворах Люголя) в
настоящее время практически оставлены из-за длительности,
сложности и не достаточной эффективности.
В условиях стационара стерилизуются капрон, лавсан и
металлические скрепки. Для их стерилизации используется
кипячение в течение 15 минут в растворе С-4 (первомур);
автоклавирование при давлении 2 атм. в течение 20 минут.
После стерилизации шовный материал следует хранить в 96%
спирте.
27. Способы контроля стерильности
Прямой способНепрямой способ
28. Прямой способ контроля стерильности
Прямым методом является бактериологическоеисследование: берут посев с рук хирурга,
операционного поля, белья и отправляют в
бактериологическую лабораторию. Метод самый
точный, единственным недостатком является
только то, что результат становится известен
только через 3-5 суток. Поэтому посев
проводится в плановом порядке раз в 7-10 дней и
является показателем эффективности
асептических мероприятий.
29. Непрямой способ контроля стерильности
Непрямые методы позволяют определить температуру,при которой проходила стерилизация. При
автоклавировании в биксы укладывают ампулы с
веществами, имеющими температуру плавления
около 110-120 оС (бензойная кислота, резорцин,
антипирин). Если вещество расплавилось, то
материал считают стерильным. При стерилизации в
сухожаровом шкафу используются вещества с
температурой плавления более 180 оС (аскорбиновая
кислота, янтарная кислота, тиомочевина). Вместо
ампул можно использовать термоиндикатор или
максимальный термометр.
30. Обработка рук хирурга
Метод Спассокукотского-Кочергина(классический метод):
Механическая очистка (двумя щетками с мылом по 5
мин. под проточной водой).
Мытье рук в 2 тазиках с нашатырным спиртом (0,5% рр по 3 мин.).
Обработка рук спиртом (96%, 5 мин.).
Обработка ногтевого ложа пальцев кисти раствором
йода.
31. Обработка рук хирурга
Ускоренный метод:Дважды по три минуты тщательно протирают руки
до середины предплечья салфеткой, смоченной
0,5% спиртовым раствором хлоргексидина
(пливасепта).
32. Обработка рук хирурга
Ускоренный метод – раствор С4:Моют руки в теплой проточной воде с мылом.
Высушивают стерильной салфеткой.
Моют руки в тазике с раствором С4 в течение 1
мин.
33. Уборка операционных
производится влажным способом. Различают:1. Предварительная - проводится ежедневно утром перед началом
операций. Протирают антисептиками пол, стены, подоконники и др.,
чтобы убрать пыль, которая осела за ночь.
2. Текущая - в процессе операции убирают упавшие на пол предметы,
вытирают пол, загрязненный кровью и другими жидкостями. По
окончании операции обрабатывают операционный стол, пол вокруг
стола и испачканную мебель.
3. Заключительная - после окончания операционного дня. Это мытье
пола, стен (на высоту человеческого роста), протирают мебель.
4. Генеральная - мытье операционной один раз в 7 - 10 дней горячей
водой с мылом и антисептиками, включая потолок. Протирают
мебель и аппаратуру.
Уборка операционных осуществляется влажным способом (1%
хлорамин Б, 3% перекись водорода с 0,5% раствором моющих
средств, 0,2% дезоксон - 1, 2% дихлор - 1 и др.).
Для уменьшения бактериальной загрязненности операционных
используют воздухоочистители, бактерицидные лампы.
Для обеспечения асептической работы необходимо хорошо знать возможные источники попадания микробов в рану. Это два источника: экзогенный и эндогенный.
Экзогенной считается инфекция , попадающая в рану из внешней среды: из воздуха - пыль, капли жидкости (воздушно-капельный путь);
с предметами, соприкасающимися с раной: инструментарий, белье, перевязочный материал, руки хирурга (контактный путь);
Имплантационный путь передачи инфекции . Имплантация – внедрение, вживление в организм больного искусственных чужеродных материалов и приспособлений с определенной лечебной целью. Источниками имплантационной инфекции являются:
Шовный материал;
Дренажные трубки;
Катетеры;
Протезы клапанов сердца, сосудов, суставов и т.д.;
Специальные металлические приспособления (скобки и скрепки из сшивающих аппаратов, спицы, шурупы, пластины для остеосинтеза);
Кава - фильтры, спирали, стенты;
Трансплантированные органы.
Эндогенной называется инфекция, источник которой находится в организме больного. Источники эндогенной инфекции:
кожные покровы больного;
очаги «дремлющей» инфекции: кариозные зубы, воспалительные заболевания мочевыводящих путей, хронический тонзиллит, хронический бронхит и т.д.
Пути попадания эндогенной инфекции в рану:
по кровеносным сосудам (гематогенный),
по лимфатическим сосудам (лимфогенный);
непосредственный (контактный)
Профилактика эндогенной инфекции включает выявление возможных очагов эндогенной инфекции и их санация перед выполнением плановой операции.
Если при обследовании выявлен источник эндогенной инфекции (кариес, аднексит и др.), плановую операцию нельзя выполнять до ликвидации воспалительного процесса . После перенесенного инфекционного заболевания запрещается выполнение плановой операции в течение 2-х недель после полного выздоровления.
Принципы организации и планирования хирургического отделения
Принцип соблюдения правил асептики и антисептики лежит в основе организации хирургического стационара . Большинство больниц строится в зеленых, наиболее чистых районах. Хирургические отделения не должны располагаться на первом этаже стационара, по возможности палаты должны быть рассчитаны на 1-2 человек. Площадь палат общехирургического профиля определяется из расчета 6,5 - 7,5 м 2 на одну койку при высоте помещения не менее 3 м и ширине не менее 2,2 м.. Стены должны быть выложены плиткой или окрашены краской. Поверхность стен, полов и потолков помещений должна быть гладкой, без дефектов, легкодоступной для влажной уборки и обработки моющими и дезинфицирующими средствами. Покрытия пола должно плотно прилегать к основанию. Сопряжение стен и полов должно иметь закруглённое сечение, стыки должны быть герметичными. Полы должны быть каменными или заливными, либо покрыты линолеумом.
При использовании линолеумных покрытий края линолеума у стен должны быть подведены под плинтуса. Швы, примыкающих друг к другу листов линолеума, должны быть пропаяны. В вестибюлях полы должны быть устойчивы к механическому воздействию (мраморная крошка, мрамор, мозаичные полы и др).
Ориентация окон палат и лечебно-диагностических кабинетов хирургического отделения может быть любая, соотношение площади окон и пола должна составлять 1:6, 1:7. Температура воздуха в палатах -18-20 0 С, влажность воздуха - 50-60%.
Вентиляция воздуха достигается путем открытия форточек. Для обеззараживания воздуха применяются бактерицидные ультрафиолетовые лампы. Лампы должны гореть в течение всего времени уборки палат и не менее часа после нее, так как во время уборки в воздух поднимается большое количество бактерий.
В помещениях хирургических стационаров больниц, построенных по современным типовым проектам, устраивается кондиционирование воздуха и механическая приточно-вытяжная вентиляция. Подачу приточного воздуха следует осуществлять сверху вниз, причем расположение приточных и вытяжных отверстий должно быть таким, чтобы исключалась возможность образования в помещении невентилируемых мест.
Мебель должная быть легкой, без сложной конфигурации поверхностей, иметь колесики для передвижения. Количество мебели следует максимально ограничивать в соответствии с потребностями.
В структуру хирургического отделения входят: палаты для больных, пост палатной медсестры, процедурный кабинет, чистая и гнойная перевязочные, санитарная комната, лечебные и диагностические кабинеты, кабинеты заведующего отделением и старшей медсестры, ординаторская, сестринская.
В хирургическом отделении должны быть туалеты, ванная, клизменная, отдельно должны быть туалет и душ для медицинского персонала.
Для кормления больных предусмотрена столовая. В хирургическом отделении кормление больных проводится, согласно, диеты, назначенной врачом. Кормление тяжёлобольных осуществляется средним и младшим медперсоналом.
Важное, значение для профилактики внутригоспитальной инфекции имеет правильное размещение больных в отделении. Чёткое разделение «чистых» и «гнойных» больных.
Обязательно каждому больному выделяют индивидуальные предметы ухода (подкладные судна, утки), которые дезинфицируют после использования каждым больным.
В структуре хирургического отделения с коечным фондом на 30 и более пациентов необходимо иметь две перевязочные - для проведения «чистых» и «грязных» перевязок . В хирургическом отделении, имеющем до 30 коек, допускается наличие одной перевязочной. Очередность перевязок планируется с учетом чистоты раны. При подготовке к работе перевязочной до начала работы проводится влажная уборка помещения перевязочной с обработкой всех поверхностей дезинфицирующими средствами.
Перевязочный стол для пациента (кушетка) дезинфицируют способом протирания и накрывают чистой простыней (пеленкой) перед каждой новой перевязкой.
Медицинская сестра и врач должны работать в халате (при необходимости – и в фартуке), перчатках, шапочке, маске. Предпочтительны халаты однократного применения.
Снятие повязки проводится перевязочной сестрой в чистых (нестерильных) перчатках.
Лечащий врач (оперирующий хирург) проводит перевязку в стерильных перчатках, которые меняет при каждой перевязке.
Все предметы со стерильного перевязочного стола берутся стерильным корнцангом (пинцетом).
По окончании перевязки отработанный материал, использованные перчатки, халаты сбрасывают в ёмкость для сбора отходов класса «Б», и в дальнейшем подвергают дезинфекции и утилизации.
Инструменты многократного применения после перевязки дезинфицируют способом погружения в дезинфицирующий раствор, затем подвергают предстерилизационной очистке и стерилизации (в ЦСО – при его наличии в лечебной организации).
В конце рабочего дня проводят уборку перевязочной дезинфицирующими средствами. Для обеззараживания воздуха в перевязочных, процедурных кабинетах применяются бактерицидные ультрафиолетовые лампы. Лампы должны гореть в течение всего времени уборки и не менее часа после нее. Бактерицидная лампа создает вокруг себя стерильную дозу до 2 - 3 метров. Один раз в неделю проводят генеральную уборку в перевязочной, о чем делают запись в журнале регистрации уборок.
Контроль обсемененности разных объектов и воздуха в хирургических отделениях осуществляется 1 раз в месяц. Выборочный контроль стерильности инструментов, перевязочного материала, рук хирурга, кожи, операционного белья и др. проводят 1 раз в неделю.
Для профилактики воздушно-капельной инфекции большое значение имеет соблюдение правил личной гигиены медперсоналом, отстранение от работы сотрудников с простудными и гнойничковыми заболеваниями.
Согласно приказу № 720 1 раз в 3 месяца проводится обследование медперсонала на носительство стафилококка в носоглотке. При положительном ответе сотрудник отстраняется от работы, в течение 3-4 дней закапывает в нос антисептик, регулярно проводит полоскания зева, после чего у него повторно берут мазок из носоглотки.
В профилактике внутригоспитальной инфекции в хирургическом отделении играет роль правильная утилизация отходов и уборка отделения.
Все отходы делятся на 5 групп и подлежат утилизации после соответствующей подготовки.
АСЕПТИКА (греческий а- отрицательный +septikos гнойный, вызывающий нагноение) - система профилактических мероприятий, направленных против возможности попадания микроорганизмов в рану, ткани, органы, полости тела больного (раненого) при хирургических операциях, перевязках, эндоскопии и других лечебных и диагностических манипуляциях. Асептика включает:
а) стерилизацию инструментов, материалов, приборов и пр.,
б) специальную обработку рук хирурга,
в) соблюдение особых правил и приемов работы при производстве операций, исследований и т. п., г) осуществление специальных санитарно-гигиенических и организационных мероприятий в лечебном учреждении.
Метод асептики является дальнейшим развитием метода антисептики и тесно связан с ним (см. Антисептика).
Основоположники асептики - немецкие хирурги Бергманн (E. Bergmann) и Шиммельбуш (C. Schimmelbusch), а в России - М. С. Субботин, П. И. Дьяконов.
В 1890 году на X Международном конгрессе врачей в Берлине Бергманном был впервые провозглашен основной закон асептики: все, что приходит в соприкосновение с раной, должно быть свободно от бактерий.
Вначале метод асептики был направлен на предохранение больного и персонала от вредного действия антисептических препаратов (карболовая кислота, сулема и др.). Физические факторы, уничтожая микробов на всем, что соприкасается с раной, позволяли избежать непосредственного воздействия на рану токсичных антисептиков.
В дальнейшем выяснилось, что одна асептика не в состоянии обеспечить профилактику нагноений и что необходимо комплексное применение асептики и антисептики. Создано множество новых высокоактивных антисептических веществ и препаратов (антибиотики, сульфаниламиды, нитрофурановые соединения и др.), оказывающих менее вредное влияние на организм.
В целях обеспечения асептики в последние годы стал использоваться ряд физических факторов (радиоактивные излучения, ультрафиолетовые лучи, ультразвук и др.).
Выделяют два источника хирургической инфекции : экзогенный и эндогенный. Эндогенный источник находится в организме больного, экзогенный - в окружающей среде.
В предупреждении эндогенного инфицирования основная роль принадлежит антисептике, экзогенного инфицирования - асептике.
Экзогенная инфекция подразделяется на воздушную, капельную, контактную, имплантационную.
Источником воздушной инфекции являются микробные клетки, находящиеся в воздухе во взвешенном состоянии. Особенно насыщен микробами воздух городов, закрытых помещений, больниц.
Борьба с воздушной инфекцией - это прежде всего борьба с пылью. Основные мероприятия, направленные на уменьшение воздушной инфекции, сводятся к следующему:
1) устройство правильной вентиляции операционных и перевязочных (кондиционирование воздуха);
2) ограничение посещения операционных и сокращение передвижения по ним персонала и посетителей;
3) защита от статического электричества, способствующего рассеиванию пыли;
4) влажная уборка помещений;
5) регулярное проветривание и облучение помещения операционной ультрафиолетовыми лучами;
6) сокращение времени контакта с воздухом открытой раны.
Капельная инфекция - разновидность воздушной инфекции, когда источником инфицирования является воздух, загрязненный капельками слюны изо рта и дыхательных путей больного, персонала или мелкими каплями других инфицированных жидкостей. Капельная инфекция, как правило, наиболее опасна для больного.
Основные мероприятия, направленные на борьбу с капельной инфекцией,- запрещение разговоров в операционной, обязательное ношение марлевых масок, прикрывающих рот и нос персонала, а также своевременная текущая уборка операционных.
Контактная инфекция - инфицирование раны при соприкосновении с ней нестерильных инструментов, инфицированных рук, материалов и др.
Профилактика контактной инфекции заключается в стерилизации всех приборов, инструментов и материалов, соприкасающихся с раной (см. Стерилизация , в хирургии), и строгом соблюдении правил обработки рук хирурга (см. Обработка рук). Важное значение придается также оперированию в перчатках и выполнению большинства манипуляций с тканями при помощи инструментов, а не рук.
Имплантационная инфекция - инфекция, вносимая в рану шовным материалом, тампонами, дренажами, протезами и т. п.
Профилактика этой инфекции заключается в тщательной стерилизации шовного материала, дренажей, эндопротезов и т. д. и по возможности более редком использовании оставляемых в ране инородных тел (применение бестампонного метода лечения ран, рассасывающихся шовных материалов и т. п.).
Имплантационная инфекция часто может быть дремлющей (латентной) и проявить себя только через длительный период времени при ослаблении защитных сил организма.
Особое значение профилактика имплантационной инфекции приобретает при пересадке органов и тканей, так как при применении различных иммунодепрессорных веществ подавляются защитные силы организма, в результате чего обычно невирулентная сапрофитная микрофлора становится весьма опасной.
Метод асептики для уничтожения микроорганизмов и их спор требует применения физических факторов и химических веществ.
Из физических факторов наиболее часто используется действие высокой температуры, вызывающей денатурацию белков микробной клетки. Споры большинства микробов более устойчивы к действию высокой температуры.
Чувствительность микробов к температуре зависит от их вида, штамма и состояния микробной клетки (делящиеся и молодые бактерии более чувствительны). Важное значение имеет и среда, в которой находятся бактерии (белки, сахар уменьшают чувствительность, а щелочи и кислоты увеличивают ее). Холод задерживает размножение микробных клеток, не оказывая выраженного бактерицидного действия.
Выраженным бактерицидным действием обладают ультрафиолетовые лучи. От их действия погибают микробы в воздухе, на поверхности тканей, на коже живых объектов, на стенах и полу помещений и т. п.
В последнее время арсенал асептики пополнился гамма - лучами, источником которых обычно являются радиоактивные изотопы 60 Со и 137 Cs. Стерилизацию этими лучами проводят в специальных камерах при дозе 1,5-2 млн. р. Этим методом можно стерилизовать белье, шовный материал, системы для переливания крови и др.
Ультразвуковая стерилизация требует мощных генераторов ультразвука и практического значения пока не имеет.
Жидкие среды можно освобождать от микробов и спор, подвергая их фильтрации через бактериальные фильтры, однако они не задерживают фильтрующихся вирусов.
Химические вещества, применяемые для стерилизации, должны быть бактерицидными и не портить инструменты и материалы, с которыми они соприкасаются.
Кроме традиционных веществ, заимствованных из арсенала антисептики (йод, спирт, хлорамин и др.), для обеззараживания приборов, инструментов, материалов применяются и другие вещества (например, диацид).
В профилактике инфицирования ран большое значение имеют дополнительные мероприятия: обкладывание краев раны стерильными салфетками, поэтапная смена инструментов и белья, повторное мытье рук хирургов или смена перчаток после «грязных» этапов операции, закрывание раны салфетками при вынужденной остановке операции, а также наложение послеоперационной повязки.
В последнее время вместо повязок иногда для закрытия раны применяют пленкообразующие вещества (типа пластубола), которые обычно упаковываются в аэрозольные баллоны.
Для обеспечения мер асептики чрезвычайно большое значение имеют организационные мероприятия. Среди них наиболее важна правильная планировка хирургических отделений и операционных блоков (см. Операционная , Операционно-перевязочный блок), уменьшающая опасность воздушнокапельной и внутрибольничной инфекции. Для особо «чистых» операций (трансплантация органов и тканей) строят «сверхчистые» операционные и «сверхчистые» отделения, где достигается высокая степень изоляции больных от персонала, что становится возможным при использовании мониторных систем для наблюдения за больными (см. Мониторное наблюдение).
Важным мероприятием по обеспечению асептики является санация обслуживающего персонала. Исследования последних лет показывают, что нередко источником хирургической инфекции является медперсонал, в зеве и носоглотке которого часто находится антибиотикоустойчивая патогенная флора. В случаях, когда санация не дает результатов, приходится прибегать к трудоустройству стойких бациллоносителей вне хирургических отделений.
Библиография: Брейдо И. С. История антисептики и асептики в России, Л., 1956, библиогр.; Инфекция в хирургии, в кн.: 24-й конгр. Международн. о-ва хирургов, под ред. Б. В. Петровского, т. 1, с. 21, М., 1972; Машковский М. Д. Лекарственные средства, ч. 2, с. 436, М., 1972; Стручков В. И. Очерки по общей и неотложной хирургии, с. 77, М., 1959; U s ade 1 W. Die Aseptik und die Antiseptik in der Chirurgie, в кн.: Chirurgie, hrsg. v. M. Kirschner u. O.Nordmann, Bd 1, S. 393, B.- Wien, 1940.
В. И. Стручков, В. A. Сахаров.
Асептика
Асептика – система мероприятий, обеспечивающих предупреждение попадания микробов в операционную рану. Соблюдение всех мероприятий асептики и антисептики перед операцией значительно снижает возникновение послеоперационных осложнений. Обеспечивать правильное выполнение асептических мероприятий помогают определенные организационные мероприятия. Они подразумевают использование различного рода факторов:физических, химических, биологических. В различных профильных учреждениях одного стационара асептические мероприятия различаются между собой. Для хирургических отделений основной закон асептики имеет следующее значение: «Все, что приходит в соприкосновение с раневой поверхностью, должно быть свободно от бактерий, должно быть стерильным».
Выделяются два основных пути проникновения микробных агентов в организм: первый подразумевает попадание инфекционного агента в рану из внешней среды. Этот путь называется экзогенным. Инфекционный агент может попадать из воздуха(воздушная инфекция), с брызгами слюны и другими биологическими жидкостями(капельная инфекция), через непосредственныйконтакт соприкасающихся с раной предметов (инструментов, перевязочного материала, дренажей и др.). При втором пути происходит попадание микробного агента из внутренней среды организма или с кожных покровов. Этоэндогенный путь инфицирования. Возможность такого пути проникновения микроорганизмов в рану обусловлена наличием хронических воспалительных процессов в организме. Эндогенная инфекция распространяется, как правило, по сосудистому руслу(кровеносному илилимфатическому).
Для выполнения условий асептики необходима правильная планировка отделений в лечебном учреждении. Операционные следует размещать в отдельном крыле, а палаты реанимации – наиболее близко к операционным. Палаты для больных с гнойными осложнениями необходимо располагать в другом конце или на другом этаже. Больничная мебель и интерьер должны отвечать определенному ряду стандартов для мебели медицинских учреждений: мебель быть удобной для больного, при этом максимально облегчать медицинскому персоналу уход за больными, легко передвигаться по палате, а при необходимости – и по отделению. Ее необходимо выполнять из легкого и пригодного материала, позволяющего поддерживать необходимую чистоту и длительное время не портящегося от частого мытья и влажной дезинфекции.
Дезинфекция воздуха обычно проводится бактерицидными ультрафиолетовыми лампами из фиолетового стекла, дающими коротковолновое излучение. Такие мероприятия на °/3 снижают развитие гнойных осложнений в послеоперационном периоде.
Необходимо проводить профилактику контактной инфекции, которая заключается в подготовке рук медицинского персонала к операции, стерилизации инструментов, перчаток, перевязочного материала. Специальная обработка рук важна не только перед операцией, но и при обработке операционного шва во время перевязок, перед выполнением различных инвазивных мероприятий и т. д.
Для предупреждения попадания микробов в операционную рану необходимо проводить стерилизацию.
Стерилизация представляет собой метод полного уничтожения микроорганизмов и их спор на изделиях, соприкасающихся с раневой поверхностью, кровью, инъекционными препаратами. Общепринятыми являются такие методы, как паровой, воздушный, химический, обжигания, прокаливания. Перед непосредственным выполнением любого из этих методов стерилизации все изделия должны предварительно пройти дезинфекцию, механическую очистку, контроль качества предстерилизационной очистки, проверку готовности изделия к выполнению стерилизации.
Паровой метод стерилизации проводится насыщенным водяным паром под давлением, что осуществляется в паровых автоклавах. Данному виду стерилизации подвергаются белье, перевязочные материалы, инструментарий, детали приборов, шприцы, стекло, резина. Упаковочным материалом для этих предметов являются двойной слой бязевой ткани, однослойные конверты из специального пергамента, металлические барабаны с отверстиями на боковых поверхностях(биксы). Обязательными являются наличие на этикетке бикса даты стерилизации и подпись медицинской сестры.
При давлении в 2 атм и температуре 132 °C время стерилизации составляет 20 минут; при давлении в 1,1 атм и температуре 120 °C – 45 минут.
В ходе стерилизации необходимо проводить контроль: термический (измерение температуры в стерилизуемом материале);бактериологический (проведение специальных биотестов на микроорганизмы). При режиме подачи водяного пара в 2 атм применяется в качестве индикатора мочевина, при подаче пара в 1,1 атм – бензойная кислота. По прекращении процесса стерилизации данные индикаторы изменяются – мочевина, вначале желтая, становится сиреневой или розовой.
Воздушная стерилизация проводится сухим горячим воздухом в сухожаровых шкафах. Так стерилизуются изделия из металла, стекла. Стерилизация проводится в крафт-бумаге или совсем без упаковки (открытым способом). В пакет обычно кладут один шприц и две иглы. При стерилизации открытым способом инструменты кладутся на сетку в один слой. Режим стерилизации при температуре 180 °C составляет 1 час, при температуре 160 °C – 1,5 часа.
Химический метод стерилизации подразумевает применение различных химических препаратов. Рекомендуется для изделий из полимерных материалов, резиновых изделий, стекла. Изделия полностью погружаются в химический раствор в эмалированной, стеклянной или пластиковой посуде на определенное время. На крышке посуды для стерилизации указываются дата и вид химического раствора, фамилия медицинского работника, проводившего стерилизацию и приготовление химического раствора. По окончании стерилизации все изделия и инструменты ополаскивают водой двукратно. В дальнейшем все простерилизованные инструменты закладываются в стерильные биксы, дно которых выстилается стерильными простынями. Срок хранения бикса в закрытом виде составляет 3 суток.
Газовая стерилизация применяется при стерилизации эндоскопических инструментов и изделий из пластмассы. Применяется определенный газ. В качестве упаковочного материала используются двойные пакеты из полиэтиленовой пленки.
Стерилизация при помощи обжигания не дает достаточно хорошего стерилизационного эффекта. Применяется для стерилизации внутренней поверхности лотков. В лоток наливается этиловый спирт так, чтобы была смочена вся поверхность, после чего спирт поджигают. Пламя должно равномерно охватывать всю поверхность. Процесс обжигания в среднем продолжается 2–3 минуты.
Централизованная стерилизация проводится в специализированном стерилизационном отделении, которое должно быть при крупных лечебных учреждениях.
Антисептика
Антисептика представляет комплекс мероприятий, направленных на уничтожение микробов в операционной ране или в организме в целом. Антисептика является определенной частью химиотерапии, которая направлена на инфекционный агент. Антисептика различается по виду. Она бывает физической, механической, биологической, смешанной.
Физическая антисептика
Физическая антисептика основана на применении физических методов уничтожения микробов в ране. Основной задачей этого вида антисептики является обеспечение выхода раневого отделяемого на повязку. Осуществить это можно с помощью гигроскопической марли, специальных антисептических губок и др. Современные методы антисептики используют ультрафиолетовые лучи, ультразвук, лазерный луч, другие физические факторы.
Механическая антисептика
Механическая антисептика заключается в применении механических методов очистки раны от микроорганизмов, инородных тел и нежизнеспособных тканей. Механический метод заключается в туалете операционной или других видов раны.
Биологическая антисептика
Биологическая антисептика проводится с помощью химиотерапевтических препаратов, которые могут действовать непосредственно на микроорганизмы, на их токсины или через другие микроорганизмы. Такие препараты должны обладать выраженными бактерицидными или бактериостатическими свойствами.
Бактерицидный эффект антибактериальных препаратов связан сгубительным действием на микроорганизмы.
Бактериостатические антибактериальные препаратыпрепятствуют нормальной жизнедеятельности и размножению микроорганизмов.
Имеется группа бактериофагов, которые представляют клеточные структуры определенных микроорганизмов, выполняющие очистительную функцию, поглощая и переваривая патологические микроорганизмы.
Действие антитоксинов основано на их противовоспалительном, противомикробном свойстве. Антитоксины оказывают к тому же ииммуностимулирующее действие. Эти препараты вводятся преимущественно в виде сывороток. К антитоксинам также относятся вакцины, кровь, плазма, иммуноглобулины.
Химическая антисептика
Химическая антисептика предусматривает применение различных химических веществ, оказывающих бактерицидное и бактериостатическое действие. Применяемые препараты должны быть достаточно безопасными для организма человека, применяться в разумной дозировке. Наиболее часто применяются следующие препараты:
Для промывания ран – раствор хлорамина Б 1–2 %, для дезинфекции рук – раствор хлорамина Б 0,5 %;
Для обработки операционного поля – раствор йодоната 1 %; для дезинфекции операционного поля, рук оперирующего персонала, краев раны применяют спиртовой раствор йода;
Для обработки рук хирурга, хранения шовного материала (шелка, кетгута) – раствор этилового или винилового спирта 70–95 %;
Для обработки ран и кожи во время операции – раствор перекиси водорода 3 %;
Для полоскания полости рта используется раствор калия перманганата 0,1–0,05 %, для спринцеваний – с разведением 0,02– 0,1 %;
Для смазывания ожоговых и язвенных поверхностей используется раствор перекиси водорода 2–5 %; спиртовой раствор метиленового синего 1–3 %;
Для стерилизации и дезинфекции перчаток, а также предметов ухода за больными применяется дихлорид ртути (или сулема);
Для промывания полостей суставов, плевральной или брюшной полостей, влагалища, гнойных послеоперационных и других видов ран, пролежней, ожоговых поверхностей используется раствор фурацилина 1: 5000;
Для обработки послеоперационных швов и ран – раствор нитрата серебра 1–2 %, поскольку обладает противовоспалительным и подсушивающим свойствами;
Для лечения ран применяется риванол (этакридина лактинат) в растворах 1: 500 или 1: 2000;
Для дезинфекции дренажей, перчаток, хирургических инструментов применяется раствор формальдегида (или формалин); также может быть использован фенол (или карболовая кислота) 2–3 %; эти средства относятся к сильным ядам.
Смешанная антисептика
Смешанная антисептика предусматривает применение двух или трех методов антисептики одновременно или последовательно. При этом выделяется поверхностная и глубокая антисептика.
При поверхностной антисептике химический препарат применяется поверхностно в виде присыпок, мазей, промывания раны и полостей антисептическими растворами.
Глубокая антисептика – химический препарат вводится глубоко в ткани, а также в область вокруг раны или в область воспалительного очага. Выполняется лечебная блокада.
Дезинфекция кипячением выполняется в специальном дезинфекционном кипятильнике с применением дистиллированной воды в течение 30 минут. В некоторых случаях в воду добавляют соду и кипятят только 15 минут. Время устанавливается с момента закипания жидкости.Воздушный метод дезинфекции проводится сухим воздухом в сухожаровом шкафу при температуре 120 °C в течение 15 минут.Паровой метод дезинфекции проводится в специальном автоклаве при помощи водяного пара под давлением. Для каждого вида материала установлены нормы температуры и давления.Химическая дезинфекция осуществляется при помощи химических обеззараживающих средств, чаще раствора хлорамина 3 %, раствора хлорной извести. Дезинфекция выполняется в эмалированной или стеклянной посуде с крышкой. На данной емкости должна обязательно быть этикетка, на которой указывается дата разведения и ставится подпись выполнившей разведение медицинской сестры. Все дезинфицируемые предметы должны быть погружены в раствор полностью.
Система мероприятий, которая направлена на предупреждение попадания и внедрения возбудителей различных инфекций в рану, полости тела, ткани больного при диагностических процедурах, хирургических операциях и перевязках. Ее эффективность достигается путем уничтожения микробов при дезинфекции и стерилизации с применением химических веществ и использованием физических факторов.
Антисептика – это комплекс лечебно-профилактических мероприятий, проводящийся с целью уничтожения микробов в ране или в организме. Различают два вида хирургической инфекции: экзогенный и эндогенный. Экзогенный источник инфекции находится в окружающей среде, эндогенный - в организме больного. Основная роль в предупреждении эндогенного инфицирования принадлежит антисептике, экзогенного - асептике.
Виды асептических и антисептических мероприятий
К основным асептическим мероприятиям относят борьбу с воздушной инфекцией. С этой целью регулярно проводят влажную уборку, проветривание и облучение помещений медучреждений, во время проведения операции сокращают время контакта открытой раны с воздухом. Для борьбы с капельной инфекцией медперсоналу запрещают разговаривать в операционной или в перевязочной, проводят своевременную уборку этих помещений. В целях борьбы с контактной инфекцией проводят стерилизацию инструментов, материалов и приборов, соприкасающихся с раной. Одним из самых важных мероприятий по обеспечению асептики является санация медперсонала.
К антисептическим мероприятиям относят первичную хирургическую обработку ран, удаление нежизнеспособных и инфицированных , инородных тел, наложение гигроскопических повязок, ультразвуком, сухим теплом, использование бактериостатических и бактерицидных веществ. Патогенные микробы могут попасть в больного через руки медицинских работников. С целью предупреждения инфицирования проводят местную антисептику - гигиеническую обработку кожи рук медперсонала до и с инфекционными больными с их выделениями, до инструментальных и мануальных исследований, не связанных с в стерильные полости, посещения инфекционных стационаров, после посещения туалета и перед уходом домой. Также существуют и общие антисептические мероприятия, которые включают в себя насыщение организма специальными препаратами (сульфаниламиды, антибиотики), воздействующими на очаг инфекции или на патогенную микрофлору.